Санэпидем заключение виварий: ФАС России | Решение по результатам внеплановой проверки ГУКС

Разное

Содержание

Россельхознадзор — Официальный сайт — Версия для печати

Россельхознадзор — Официальный сайт — Версия для печати

Официальный сайт
Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору
(http://www.fsvps.ru)

Россельхознадзор / События

14 сентября 2016 г.

О получении ФГБУ «Красноярский референтный центр Россельхознадзора» санитарно-эпидемиологического заключения

С целью расширения спектра оказываемых услуг в части проведения диагностических исследований на болезни животных ФГБУ «Красноярский референтный центр Россельхознадзора» в 2016 году был разработан план мероприятий. Для подготовки к расширению области аккредитации были проведены ремонт вивария, доукомплектация лаборатории необходимым оборудованием и расходными материалами, обучение специалистов.

В настоящее время испытательная лаборатория ФГБУ «Красноярский референтный центр Россельхознадзора» успешно прошла процедуру подтверждения соответствия требованиям санитарного законодательства условий выполнения работ с биологическими веществами, биологическими и микробиологическими организмами и их токсинами и получила санитарно-эпидемиологическое заключение.

Необходимый пакет документов, в том числе заявка на переоформление лицензии на осуществление деятельности в области использования возбудителей инфекционных заболеваний человека и животных (за исключением случая, если указанная деятельность осуществляется в медицинских целях) и генно-инженерно-модифицированных организмов III и IV степеней потенциальной опасности, осуществляемая в замкнутых системах, уже находится на рассмотрении в Управлении федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека по Красноярскому краю.

Получение лицензии сыграет огромную роль в дальнейшем развитии испытательной лаборатории учреждения и даст возможность расширения области аккредитации.

Россельхознадзор / События / http://www.fsvps.ru/fsvps/events/18394.html

Наше строительство » ФГБУ Саратовская МВЛ

Общая информация

Объект капитального строительства : «Реконструкция комплекса зданий ФГБУ «Саратовская МВЛ» в целях размещения лаборатории соответствующего уровня биологической защиты для работы с возбудителями АЧС и иными особо опасными болезнями животных по адресу: Саратовская область, г. Саратов, ул. им. Блинова Ф.А., д.13».

Заказчиком является Федеральное государственное бюджетное учреждение «Саратовская межобластная ветеринарная лаборатория» (ФГБУ «Саратовская МВЛ»).

В 2015 году Министерством сельского хозяйства РФ и Федеральной службой по ветеринарному и фитосанитарному надзору было принято решение о выделении Учреждению денежных средств на реализацию Федеральной адресной инвестиционной программы, в целях размещения лаборатории соответствующего уровня биологической защиты для работы с возбудителями АЧС и иными особо опасными болезнями животных.

В 2017 году обществом с ограниченной ответственностью Научно-исследовательский и проектный институт «САРАТОВЗАПСИБНИИПРОЕКТ-2000» была разработана проектно-сметная документация на данный объект на которую в этом же году было получено положительное заключение государственной экспертизы ФАУ «ГЛАВГОСЭКСПЕРТИЗА РОССИИ».

Строительство объекта осуществляло ООО Специализированный застройщик «СК «Система» оно было начато в августе 2018 года, 27 декабря 2019 года строительство было завершено.

После чего Учреждение приступило к процедуре ввода нового здания в эксплуатацию. В рамках подготовки документации для ввода объекта в эксплуатацию Учреждением был разработан проект санитарно-защитной зоны, который прошел экспертизу. 26 мая 2020 года получено санитарно-эпидемиологическое заключение и Решение Управления Роспотребнадзора по Саратовской области об установлении санитарно-защитной зоны на территории ФГБУ «Саратовская МВЛ». 04 июня 2020 года Учреждением было получено разрешение на ввод объекта в эксплуатацию. 05 июня 2020 года новое здание было поставлено на кадастровый учет. 29.06.2020 года была произведена государственная регистрация права оперативного управления новой лаборатории.

В новом здании предусмотрено содержание лабораторных животных, и возможность проведения всего комплекса биологических исследований на инфекционные заболевания, возбудители которых относятся к различным группам патогенности, в том числе африканская чума свиней, бешенство животных, сибирская язва, грипп птиц, бруцеллез, туберкулез сельскохозяйственных животных, анаэробные инфекции и иные особо опасные инфекции, в том числе общие для человека и животных (антропозоонозы). Предусмотрено раздельное содержание здоровых и заразных животных, также проведение исследований на современном оборудовании: ламинарные боксы, санитарные пропускники, а также обеспечено требование биологической безопасности по средствам систем обеззараживания сточных вод, установки современной системы приточно-вытяжной вентиляции с необходимой степенью по очистке (фильтрации), обеззараживанию и другие технические решения. Реализованный проект делает ФГБУ «Саратовская МВЛ» мощным и современным межрегиональным лабораторным центром по борьбе с особо опасными болезнями животных, в том числе и общих для человека и животного, обеспечивает биологическую, экономическую и продовольственную безопасность регионов, находящихся в зоне обслуживания Учреждения!

 

Сведения об объекте капитального строительства:

Объект: Здание вивария. Адрес объекта: 410064, Саратовская область, г. Саратов, Ленинский район, ул. им. Блинова Ф.А., д. 13.

Площадь застройки — 680,0 м2

Количество этажей — 2-3 (три этажа в части здания, ограниченного осями 1-2/А-Б).

Общая площадь здания — 1134,1 м2

Полезная площадь здания — 1006,79 м2

Расчетная площадь здания — 635,74 м2

Строительный объем здания — 7259,0 м3 в том числе ниже 0,000 — 1835,0 м3

В здании предусмотрены помещения с постоянным пребыванием людей.

Уровень ответственности — нормальный.

Класс функциональной пожарной опасности — Ф4.3.

Степень огнестойкости II.

Класс конструктивной пожарной опасности — СО.

Площадь отвода участка по градостроительному плану 0,9448 га.

Площадь в границах условной планировки — 1558,3 м2.

Площадь застройки — 680 м2

Площадь твердых покрытий — 833,3 м2

Площадь озеленения — 45 м2

 

 

 

Историческая справка

ГБУ «Владимирская областная ветеринарная лаборатория»

28 октября 1944 года на базе Владимирской межрайонной ветеринарно-бактериологической лаборатории  организована областная ветеринарно-бактериологическая лаборатория. Директором назначен ветеринарный врач Николай Дмитриевич Завьялов. В это время в лаборатории содержалось 18,5 единиц штатных работников (в том числе 4,5 единиц ветврачей,  5 лаборантов, 1 препаратор). Лаборатория стала обслуживать 10 районов. Все ветврачи выезжали в закрепленные за ними районы, оказывали практическую помощь на месте.  Осваивались новые методики исследований. Лаборатория оснащалась новым оборудованием. Штат лаборатории постепенно увеличивался. Во второй половине пятидесятых годов при лаборатории организованы: производственный, эпизоотический и дезинфекционный отряды.  К лучшим организаторам и специалистам лабораторного дела относятся ветеринарные врачи, возглавившие областную лабораторию.

  • Никитин Алексей Евлампьевич ( 1961-1970 год). Создал и организовал в лаборатории отдел вирусологических и гистологических исследований. Оснастил отдел необходимыми приборами и оборудованием, подготовил специалистов по вирусологическим исследованиям.
  • Киселев Юрий Тимофеевич (1970-1978 год). Работая директором Областной ветеринарной лаборатории, построил виварий, гаражи и склады для хранения биопрепаратов.
  • Сидоров Лев Васильевич  (1978-1979 год). Освоил методику диагностики лептоспироза в областной ветеринарной лаборатории и внедрил её во всех районных и межрайонных лабораториях области.
  • Акимов Николай Савельевич  (1979-1984год). Работая директором лаборатории, подключил здание лаборатории к центральному отоплению Владимирской ТЭЦ.
  • Царева Валентина Ивановна (1984-1989 год). В 1984 году была назначена директором областной ветеринарной лаборатории. В 1985 году начала строительство здания областной ветеринарной лаборатории на 100 рабочих мест.
  • Губарь  Вячеслав Иванович (1989-2002 год). За время работы в областной ветеринарной лаборатории, закончил строительство нового здания лаборатории на 100 рабочих мест, которая была принята Государственной комиссией и пущена в эксплуатацию в 1995 году. Оснастил лабораторию новыми диагностическими приборами.

В настоящее время ГБУ «Владимирская облветлаборатория» располагается в 4-х этажном типовом здании на 100 рабочих мест.  Содержит 56 единиц штатных работников (в том числе ветеринарных врачей 33 лаборантов  7). Директором лаборатории с 2003 года назначен Алексутин Владимир Иванович.

Задачами учреждения являются предупреждение и ликвидация заразных и массовых незаразных болезней животных; обеспечение безопасности продуктов животноводства в ветеринарно-санитарном отношении; защита населения от болезней общих для человека и животных; охрана территории Владимирской области от занесения заразных болезней животных из других регионов. Областная ветеринарная лаборатория владеет всеми  утвержденными  классическими и современными методами диагностики, современным оборудованием, что сокращает время постановки диагноза для выявления возбудителей на ранней стадии заболевания, и позволяет своевременно проводить профилактические и лечебные мероприятия, а также делать более глубокие анализы качества продукции и кормов.

В связи с тем, что здание лаборатории требовало ремонта был произведен капитальный  ремонт крыши   (построена двухскатная чердачная     из оцинкованного железа), заменена система отопления и установлен счетчик тепла, проведен косметический ремонт в кабинетах, территория лаборатории обнесена забором.

Лаборатория получила Санитарно-Эпидемиологическое заключение  на работу с возбудителями 1-4 групп патогенности, лицензию выдана Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека. Учреждение выступает в качестве испытательной лаборатории, аккредитованной в системе СААЛ и ГОСТ Р ИСО/МЭК на техническую компетентность и независимость при проведении  лабораторных исследований.

Лаборатория оснащена новым современным оборудованием и приборами.

Специалисты лаборатории имеют высокую квалификацию, богатый опыт работы и профессиональные навыки.

Актуальные вопросы обеспечения биологической безопасности в лаборатории для содержания инфицированных животных

Введение

Научная и производственная направленность медико-биологических исследований с использованием патогенных биологических агентов требует серьезного комплексного подхода к соблюдению требований биологической безопасности для исключения возможности заражения персонала и окружающей среды. Лабораторные животные являются неотъемлемой частью медико-биологических исследований. К наиболее традиционным видам относят лабораторных мышей, морских свинок, кроликов [1, 2]. В качестве биомоделей их используют на всех этапах создания и производства лечебных сывороток и вакцин, применяемых для профилактики заболеваний людей и сельскохозяйственных животных.

В связи с этим исследования, направленные на обеспечение биологической безопасности в лаборатории для содержания инфицированных животных, являются, несомненно, актуальными.

Моделирование инфекционного процесса на лабораторных животных – один из самых опасных этапов исследовательской работы. При работе или в процессе ухода за животными, зараженными высоковирулентными патогенами, значительно возрастает биологическая опасность, увеличивается риск заражения экспериментатора и контаминации окружающей среды. Это связано с непредсказуемостью поведения животных при проведении различных манипуляций и как следствие с возможностью повреждения кожных покровов (укусы или царапины) сотрудников [3, 4]. Также в процессе жизнедеятельности животных образуются аэрозоли, которые не обнаруживаются и легко могут стать причиной инфицирования персонала и помещений лаборатории. Значительный объем отходов вивария составляет подстилочный материал, контаминированный мочой и фекалиями инфицированных животных и представляющий   угрозу заражения персонала [5].

В основе практики биобезопасности лежит оценка рисков [5].  Поэтому управление рисками, связанными с возбудителями опасных микроорганизмов, общих для человека и животных, подразумевает знание, понимание и соблюдение требований законодательной базы.

Цель работы – провести анализ реализации принципов биологической безопасности работы в лаборатории при содержании инфицированных животных.

Задачи исследования – изучение основных российских и зарубежных документов, регламентирующих деятельность юридических лиц с возбудителями особо опасных инфекций.

Материал и методы

Анализ источников литературы и нормативных документов по реализации принципов обеспечения биобезопасности и высокотехнологичного защитного оборудования в практике лабораторий, использующих в своей работе инфицированных животных.

Результаты и обсуждение

Основным документом, регламентирующим в Российской Федерации деятельность юридических лиц, связанных с возбудителями особо опасных инфекций, являются Санитарные правила СП 1.3.3118-13 «Безопасность работы с микроорганизмами I–II группы патогенности (опасности)». Они устанавливают требования к организационным, санитарно-противоэпидемическим (профилактическим), инженерно-техническим мероприятиям, направленным на обеспечение личной и общественной безопасности, защиту окружающей среды. Наличие лицензии на деятельность, связанную с использованием возбудителей инфекционных заболеваний соответствующей группы патогенности, дает возможность организации проводить исследования, в том числе и на лабораторных животных. Специализированные лаборатории, использующие в своей работе экспериментальных животных (виварии), должны иметь санитарно-эпидемиологическое заключение о возможности проведения определенного вида работ с конкретными видами микроорганизмов.

По классификации Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ) четыре стандартных уровня биологической безопасности установлены также для деятельности, связанной с работами с экспериментальными животными с использованием патогенных биологических агентов (ПБА)  I–IV группы. К наиболее опасным относят уровни 3, 4 [6–8]. Если говорить о российской классификации, то здесь лаборатории, проводящие работы с патогенными биологическими агентами, делятся на 2 категории: имеющие дело с микроорганизмами, представляющими высокую индивидуальную и общественную опасность (ПБА I–II группы) и работающие с микроорганизмами,  представляющими умеренную и низкую общественную и индивидуальную опасность  (ПБА III–IV группы).

Согласно принципам биологической безопасности, в лаборатории должны быть созданы факторы, определяющие безопасность работы с животными, зараженными патогенными агентами в соответствии с необходимым уровнем. К таким факторам относятся первичные и вторичные барьеры защиты персонала [3]. Средства индивидуальной защиты, специальное оборудование – первая линия защиты персонала и окружающей среды. Оснащение должно соответствовать уровню лаборатории. Разработанная внутренняя инструкция по обеспечению биологической безопасности позволяет своевременно учесть все риски биологической опасности в конкретной лаборатории.

К вторичным барьерам относят планировку помещений или ограждающие строительные конструкции, которые обеспечивают движение внутри здания, минимизируя риск перекрестного загрязнения, в полной мере исключают доступ посторонних лиц, проникновение животных извне и побег содержащихся в нем животных. В эту категорию входят проходные барьерные устройства для термической обработки и обеззараживания твердых отходов [9].

В соответствии с Санитарными правилами (СП) 1.3.3118-13 зараженные мелкие животные и эктопаразиты должны содержаться в помещениях «заразного» блока для инфицированных животных. На протяжении многих лет мелких лабораторных животных традиционно помещали в банки, ящики, садки, заранее осмотренные на целостность. Располагают такие емкости на металлических стеллажах, специальных стойках-стеллажах, которые можно обеззараживать химическими методами дезинфекции. Действующие санитарные правила по сей день не запрещают использование такого способа содержания инфицированных животных в совокупности с другими факторами биологической защиты персонала лабораторий. Однако проблемы биологической безопасности, касающиеся лабораторий повышенного риска биологической опасности, остаются актуальными, требующими постоянного анализа работы с патогенами и сведения к минимуму возможности заражения персонала.

Лабораторные животные в зависимости от целей и задач эксперимента, а также своего микробиологического статуса должны содержаться в разных условиях. Для каждой группы важно поддерживать необходимые условия безопасного содержания, чтобы избежать контаминации и защитить персонал от опасных инфекций. Правильно подобранные условия содержания также обеспечивают воспроизводимость и достоверность результатов экспериментов, проводимых на животных [10, 11].

Современные виварии предусматривают для проведения экспериментальных работ с биомоделями барьерный тип содержания. Животные категории «свободные от патогенной флоры» содержатся только при условии полной стерильности окружающей среды, в том числе воздуха. Поэтому оптимальным вариантом является использование индивидуально вентилируемых клеток при поддержании положительного давления. Содержание лабораторных животных, зараженных опасными инфекциями, в соответствии с современными представлениями биологической безопасности требует специализированного оборудования при непрерывном поддержании отрицательного давления, что предотвращает попадание возбудителя от инфицированной особи во внешнюю среду. Риск образования аэрозолей от инфицированных животных или их подстила значительно снижается при содержании животных с использованием вентиляционных систем. Чистые или иммунные конвенциальные лабораторные животные могут содержаться на обычных стеллажах в клетках.

Оборудование для содержания инфицированных животных является первой линией защиты персонала. Поэтому внедрение и переход на новые технологии содержания инфицированных животных позволят в значительной степени повысить уровень биологической защиты персонала и окружающей среды от самих животных, продуктов их жизнедеятельности, частиц подстила. Минимизировать возможность контаминации окружающей среды позволяет использование технических средств защиты и контроля, таких как боксы и шкафы биологической безопасности, вентиляционные системы для содержания животных. Наличие защитного оборудования не исключает необходимости применения современных средств индивидуальной защиты. В помещениях «заразной» зоны таких лабораторий предусмотрено создание различных депрессионных режимов в соответствии с технологическими условиями (от -1,0 до -100 ПА). Статическое давление в «заразной» зоне должно поддерживаться частотными преобразователями на приточных и вытяжных системах, обеспечивающих постоянство расходов приточного и вытяжного воздуха. Удаляемый воздух из технологических помещений в общеобменной вентиляции проходит двухступенчатую очистку HEPA-фильтрами 14 класса.

Вентиляционные системы, широкий спектр которых представлен на рынке товаров для лабораторных животных, представляют собой установку для подготовки воздуха или блок и стеллаж со специальными клетками для содержания животных. Для нужд ученых созданы различные варианты односторонних, двусторонних модулей с различным количеством и размером клеток.

Блок вентиляционной системы (рис. 1) представляет собой надежную конструкцию двухтрубной системы входа и выхода воздуха. В то же время  это сложное высокотехнологичное оборудование. Воздуховод большого сечения оптимально и равномерно распределяет воздух. Благодаря устройству воздуховодов в вентилируемых системах исключена возможность перекрестной контаминации биомоделями, инфицированными разными возбудителями. Регуляция потока воздуха позволяет создавать позитивное или негативное давление по отношению к атмосферному. Поступающий из внешней среды воздух проходит через HEPA-фильтр и подается в каждую клетку. На выходе из блока воздух очищается HEPA-фильтрами 13 или 14 классов, обеспечивающими задержку частиц высокой эффективности. Для деконтаминации внутренних поверхностей воздуховодов парами H2O2  предусмотрен специальный порт. Блок оборудован сенсорной панелью управления, позволяющей проводить мониторинг входящих и выходящих воздушных потоков, показаний температуры и влажности выходящего потока воздуха. В интерфейсе можно отследить состояние приточного и вытяжного фильтров. Имеется счетчик оставшегося времени использования фильтра, датчик сигнализирует о необходимости замены фильтра в случае его загрязнения, тест на целостность фильтра позволяют исключить проскок частиц, в том числе микроорганизмов. Система обладает возможностью мониторинга, которая, кроме звуковой сигнализации, может отправлять сообщения о состоянии параметров на сотовый телефон, персональный компьютер или другое устройство, подключенное к сети. Клетки для таких систем сделаны из прозрачного, ударопрочного и устойчивого к паровой и химической дезинфекции материала поликарбоната или полисульфона (рис. 2). Для потребностей размещения разных видов животных предусмотрены  клетки разных размеров. Пластиковая крышка с фильтром и внешней поилкой обеспечивает максимальную защиту персонала и окружающей среды.

Рис. 1. Система Bio A.S.R Vent II в сборе Рис. 2. Клетка для животных в сборе для вентиляционных систем Bio A.S.

Вентилируемые шкафы для барьерного содержания экспериментально инфицированных лабораторных животных могут использоваться при поддержании отрицательного давления (рис. 3). Оборудование обеспечено датчиками контроля частоты воздухообмена, давления, температуры в камере. Наличие сигналов тревоги, индикаторов состояния НЕРА-фильтров позволяет своевременно осуществлять техническое обслуживание оборудования. Шкафы имеют корпус из стали с порошковым покрытием, двери из оргстекла, внутреннюю камеру с полками. Кроме основных защищающих фильтров, в шкафах размещены угольные фильтры исходящего воздуха для устранения запаха, а также имеется функция подогрева и увлажнения подаваемого воздуха. На входе и на выходе воздух очищается предфильтрами и НЕРА-фильтрами и далее удаляется через подключенную систему приточно-вытяжной вентиляции.

Рис. 3. Вентилируемый шкаф UNI–PROTECT

Высокотехнологичное оборудование для содержания лабораторных животных позволяет учесть объем клетки, необходимый для определенного вида животного, нормы посадки, а также контролировать факторы микросреды, такие как температура, воздухообмен и влажность.

Для защиты персонала и окружающей среды в условиях контролируемой микробной контаминации при выполнении процедур кормления, пересадки животных используются двусторонние боксы для работы с лабораторными животными (рис. 4). Такие боксы устанавливаются в манипуляционной комнате, так как они главным образом применяются экспериментаторами при проведении различных манипуляций с биомоделями.

Рис. 4. Открытый передвижной ламинар Esco VDA-4A1

Для уменьшения вероятности инфицирования сотрудников и окружающей среды от аэрозоля, создаваемого при чистке клеток инфицированных животных, в лабораториях используются специальные боксы или ламинарные станции. Оборудование оснащено специальными емкостями для сброса отработанного грязного подстилочного материала. Принцип работы таких боксов основан на принудительном удалении опасных веществ из рабочей зоны воздушным потоком, направленным внутрь бокса через перфорацию в основании, с последующей его фильтрацией и удалением. ULPA-фильтр – это фильтр на основе активированного угля эффективно устраняет неприятный запах.

 Помещения для лабораторных животных, рабочие практические приемы и качество ухода за животными должны отвечать действующим стандартам и нормам. В нормативных документах, определяющих содержание лабораторных животных, четко установлены параметры микроклимата, нормы размещения, рационы кормления животных [12–15].

Современные представления о биологической безопасности и переход на новые технологии содержания инфицированных животных требуют квалифицированного подхода. Обучение персонала правильному использованию высокотехнологичного оборудования, его своевременной проверке для выявления возможных неисправностей является важным моментом для обеспечения биологической безопасности. Однако актуальные вопросы, возникающие при создании вивария, такие как требования к проектированию вивариев, наличие необходимого специального  оборудования, способы его установки, правила работы на нем, в российских руководствах и нормативных документах не отражены. Поэтому российские специалисты используют в своей работе опыт зарубежных специалистов и руководства ВОЗ. Эти показатели биоизоляции обеспечивают безопасную работу с животными, зараженными патогенными агентами. Риск заражения персонала на них минимален, перекрестная контаминация во время экспериментов ограничена, горизонтальный перенос между лабораторными животными сведен к минимуму, вероятность выделения возбудителей в окружающую среду мала. Описание технологии проведения безопасных работ в лаборатории, инженерно-технических мероприятия и осуществление контроля на различных уровнях биологической безопасности позволяют в полном объеме рассмотреть вопросы биологической безопасности в лаборатории для содержания инфицированных животных [16].

Заключение

Проведенный анализ реализации принципов биологической безопасности работы в лаборатории при содержании инфицированных животных и изучение основных российских и зарубежных документов, регламентирующих деятельность юридических лиц с возбудителями особо опасных инфекций, позволяют сделать выводы, что национальные Санитарные правила – это документ, устанавливающий обязательные требования, регламентирующие, в том числе комплекс мероприятий, направленных на обеспечение биологической безопасности при работе с ПБА [17–21]. Однако отсутствие в действующих Санитарных правилах перечисленных выше позиций требует совершенствования нормативной базы, разработки современного удобного для практического применения документа (см. таблицу).

Источники, содержащие требования к лабораториям, использующим лабораторных животных

Таким образом, широкое внедрение современных инженерно-технических систем обеспечения биобезопасности и высокотехнологичного защитного оборудования в практику лабораторий, использующих в своей работе инфицированных животных, особенности методических приемов при работе с ними определяют актуальность разработки специализированного нормативно-методического документа по безопасному содержанию и обращению. Следовательно, необходимо изучение применения данного оборудования с позиции выявления и оценки связанных с ним биологических рисков.

Разработка и совершенствование нормативов по безопасности деятельности с использованием ПБА являются одними из основных направлений государственной политики в области обеспечения биологической безопасности и определены законодательными и нормативно-правовыми актами Российской Федерации. Итогом предыдущих исследований национальной нормативно-методической базы обеспечения безопасности при работе с ПБА явился комплекс предложений по ее совершенствованию.  Кроме того, согласно Посланию Президента от февраля 2020 г., в Российской Федерации был запущен механизм «регуляторной гильотины», предусматривающий масштабный анализ и пересмотр действующих нормативно-правовых актов, в том числе и в области профилактики инфекционных и паразитарных болезней, что определило актуальность исследования нормативно-методической базы деятельности с использованием возбудителей инфекционных болезней ПБА.

Благодарности

Работа выполнена без спонсорской поддержки.

Вклад авторов

А.П. Семакова – существенный вклад в концепцию работы, сбор, анализ или интерпретация результатов работы, написание текста, согласие нести ответственность за все аспекты работы.

В.Г. Германчук – утверждение окончательного варианта статьи для публикации.

М.В. Гордеева – критический пересмотр его содержания, утверждение окончательного варианта статьи для публикации.

Н.Ю. Шавина – сбор, анализ или интерпретация результатов работы.

Е.В. Кислицина – сбор, анализ или интерпретация результатов работы.

Лабораторные исследования

СП «Гвардейская ветеринарная лаборатория»

В состав ветлаборатории входят 6 отделов, 2 отделения, виварий для содержания здоровых животных.

Лаборатория осуществляет на закрепленной территории диагностическую работу, проведение лабораторных исследований; диагностику болезней животных, включая сельскохозяйственных домашних, зоопарковых и других животных, пушных зверей, птиц, пчел, рыбы и других гидробионтов; обеспечивает безопасность в ветеринарно-санитарном отношении сырья и продуктов животного и растительного происхождения, кормов и кормовых добавок; стоит на страже здоровья населения от болезней, общих для человека и животных.  


             
                                      
                                                                                                                                                                                                                                                                                             

Аттестат аккредитации № RA.RU.21U302 от 25 января 2017 года удостоверяет, что структурное подразделение ГБУВ КО «Областная СББЖ» Гвардейская ветеринарная лаборатория соответствует требованиям ГОСТ ISO/IEC 17025-2019, аккредитовано в качестве Испытательной лаборатории (центра) 

                                                                                


Санитарно-эпидемиологическое заключение №39.КС.08.000.М.000801.10.14 от 23.10.2014 года удостоверяет, что Гвардейская ветеринарная лаборатория (заявитель — ГБУВКО «Областная СББЖ») соответствует государственным санитарно-эпидемиологическим правилам и нормативам.

СП 1.3.3118-13 «Безопасность работы с микроорганизмами I-II групп патогенности (опасности)».

СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами  III-IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней».

СП 1.3.2518-09 «Дополнения и изменения N 1 к санитарно-эпидемиологическим правилам «Безопасность работы с микроорганизмами  III-IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней».

                                                             
                                 
                               Прейскурант цен на платные ветеринарные услуги

Приказ от 25.02.2021 года № 33 «О внесении изменений в прейскурант цен на платные ветеринарные услуги, оказываемые Государственным бюджетным учреждением ветеринарии Калининградской области «Областная станция по борьбе с болезнями животных»

 Раздел 3. Лабораторные исследования

Типовые формы договоров оказания платных ветеринарных услуг 

Договор оказания ветеринарных услуг «Лабораторные исследования»

УВАЖАЕМЫЕ ЗАКАЗЧИКИ!

Информируем Вас о том, что в связи с вступлением в силу приказа Минэконоразвития России от 19 августа 2019 года № 506 «О внесении изменений в приказ Минэкономразвития России от 30 мая 2014 г. № 326 «Об утверждении Критериев аккредитации, перечня документов, подтверждающих соответствие заявителя, аккредитованного лица критериям акредитации, и перечня документов в области стандартизации, соблюдение требований которых заявителями, аккредитации» Испытательная лаборатория СП «Гвардейская ВЛ» ГБУВ КО «Областная СББЖ» с 24 сентября 2019 года переходит на новый стандарт ГОСТ ISO/IEC 17025-2019 «Общие требования к компетентности испытательных и калибровочных лабораторий».

По возникающим вопросам Вы всегда можете обратиться по 

телефону 8(40159) 3-32-02 или по электронной почте e-mail:

[email protected]

Наши специалисты всегда готовы дать Вам консультацию по

 проведению исследований и правильному оформлению необходимых документов.

 


Государственное бюджетное учреждение УФИМСКИЙ НИИ ГЛАЗНЫХ БОЛЕЗНЕЙ Академии наук Республики Башкортостан

Клинический корпус 2, литера Б (531,5)Россия, Республика Башкортостан, г.Уфа, р-н Кировский, ул.Пушкина, д.90, инд.450008Клинический корпус 2, литера Б (531,5)Оперативное управлениеРеспублика БашкортостанСвидетельство о ГРП РБ №04 А В 928626 от 16.12.2010г. Свидетельство о ГРП ОУ №04 А В 928630 от 16.12.2010г.02:55:10152:41:4Свидетельство о ГРП РБ №04 А В 928626 от 16.12.2010г. Свидетельство о ГРП ОУ №04 А В 928630 от 16.12.2010г.Санитарно-эпидемиологическое заключение №02.БЦ.01.000.М.001581.11.16 от 29.11.2016 г. соответствует государственным санитарно-эпидемиологическим правилам и нормативам Закона РФ “О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения” от 30.03.99. Заключение о соответствии объекта защиты обязательным требованиям пожарной безопасности №220/02 от 14.12.2016 г.
Клинический корпус 2, литера Б1 (916,0)Россия, Республика Башкортостан, г.Уфа, р-н Кировский, ул.Пушкина, д.90, инд.450008Клинический корпус 2, литера Б1 (916,0)Оперативное управлениеРеспублика БашкортостанСвидетельство о ГРП РБ №04 А В 928626 от 16.12.2010г. Свидетельство о ГРП ОУ №04 А В 928630 от 16.12.2010г.02:55:10152:41:4Свидетельство о ГРП РБ №04 А В 928626 от 16.12.2010г. Свидетельство о ГРП ОУ №04 А В 928630 от 16.12.2010г.Санитарно-эпидемиологическое заключение № 02.БЦ.01.000.М.001581.11.16 от 29.11.2016 г соответствует государственным санитарно-эпидемиологическим правилам и нормативам Закона РФ “О сани тарно-эпидемиологическом благополучии населения” от 30.03.99. Заключение о соответствии объекта защиты обязательным требованиям пожарной безопасности №220/02 от 14.12.2016 г.
Клинический корпус 3, литера В (4725,9)Россия, Республика Башкортостан, г.Уфа, р-н Кировский, ул.Пушкина, д.90, инд.450008Клинический корпус 3, литера В (4725,9)Оперативное управлениеРеспублика БашкортостанСвидетельство о ГРП РБ №04 А В 948235 от 16.12.2010г. Свидетельство о ГРП ОУ №04 А В 948236 от 16.12.2010г.02:55:10152:41:9Свидетельство о ГРП РБ №04 А В 948235 от 16.12.2010г. Свидетельство о ГРП ОУ №04 А В 948236 от 16.12.2010г.Санитарно-эпидемиологическое заключение № 02.БЦ.01.000.М.001581.11.16 от 29.11.2016 г соответствует государственным санитарно-эпидемиологическим правилам и нормативам Закона РФ “О сани тарно-эпидемиологическом благополучии населения” от 30.03.99. Заключение о соответствии объекта защиты обязательным требованиям пожарной безопасности №220/02 от 14.12.2016 г.
Виварий, литера Е (253,9)Россия, Республика Башкортостан, г.Уфа, р-н Кировский, ул.Пушкина, д.90, инд.450008Виварий, литера Е (253,9)Оперативное управлениеРеспублика БашкортостанСвидетельство о ГРП РБ №04 А В 928628 от 16.12.2010г. Свидетельство о ГРП ОУ №04 А В 928629 от 16.12.2010г.02:55: 10152:41:8Свидетельство о ГРП РБ №04 А В 928628 от 16.12.2010г. Свидетельство о ГРП ОУ №04 А В 928629 от 16.12.2010г.Санитарно-эпидемиологическое заключение № 02.БЦ.01.000.М.001581.11.16 от 29.11.2016 г соответствует государственным санитарно-эпидемиологическим правилам и нормативам Закона РФ “О сани тарно-эпидемиологическом благополучии населения” от 30.03.99. Заключение о соответствии объекта защиты обязательным требованиям пожарной безопасности №220/02 от 14.12.2016 г.
Лечебный корпус, литера А (7127,5)Россия, Республика Башкортостан, г.Уфа, р-н Кировский, ул.Авроры, д.14, инд.450092Лечебный корпус, литера А (7127,5)Оперативное управлениеРеспублика БашкортостанСвидетельство о ГРП РБ №04 А В 948240 от 16.12.2010г. Свидетельство о ГРП ОУ №04 А В 948239 от 16.12.2010г.02:55:10836:65:15Свидетельство о ГРП РБ №04 А В 948240 от 16.12.2010г. Свидетельство о ГРП ОУ №04 А В 948239 от 16.12.2010г.Санитарно-эпидемиологическое заключение № 02.БЦ.01.000.М.001582.11.16 от 29.11.2016 г соответствует государственным санитарно-эпидемиологическим правилам и нормативам Закона РФ “О сани тарно-эпидемиологическом благополучии населения” от 30.03.99. Заключение о соответствии объекта защиты обязательным требованиям пожарной безопасности №220/02 от 14.12.2016 г.
Административно – клинический корпус, литера Б (2770,2)Россия, Республика Башкортостан, г.Уфа, р-н Кировский, ул.Авроры, д.14, инд.450092Административно – клинический корпус, литера Б (2770,2)Оперативное управлениеРеспублика БашкортостанСвидетельство о ГРП РБ №04 А В 947934 от 16.12.2010г. Свидетельство о ГРП ОУ №04 А В 947933 от 16.12.2010г02:55: 10836:65:10Свидетельство о ГРП РБ №04 А В 947934 от 16.12.2010г. Свидетельство о ГРП ОУ №04 А В 947933 от 16.12.2010г.Санитарно-эпидемиологическое заключение № 02.БЦ.01.000.М.001582.11.16 от 29.11.2016 г соответствует государственным санитарно-эпидемиологическим правилам и нормативам Закона РФ “О сани тарно-эпидемиологическом благополучии населения” от 30.03.99. Заключение о соответствии объекта защиты обязательным требованиям пожарной безопасности №220/02 от 14.12.2016 г.

В Удмуртском ветеринарно- диагностическом центре подведены итоги деятельности за 5 лет — Удмуртский ветеринарно-диагностический центр

12 апреля в БУ УР «Удмуртский ветеринарно-диагностический центр» состоялось совещание по итогам работы учреждения не только за 2017 год, но и в целом за пять лет. В его работе приняли участие и.о. начальника Главного управления ветеринарии Удмуртской Республики Н.Н. Котельников, руководители межрайонных ветеринарных лабораторий, заместители руководителя  структурных подразделений УВДЦ, коллектив учреждения.

Коротаев Павел Владимирович, директор БУ УР «УВДЦ», представил вниманию участников детальный анализ деятельности Удмуртского ветеринарно-диагностического центра, подчеркнув его важность и значимость как для государственной и производственной ветеринарной службы, так и для Удмуртской Республики в целом.

За пять лет в УВДЦ произошли значительные позитивные  перемены: Центр претерпел реорганизацию путем присоединения трех межрайонных ветеринарных лабораторий г. Воткинска, г. Сарапула и п. Игры. В его структуру влился Республиканский эпизоотический отряд. Проведены внутренние реорганизационные мероприятия: объединены серологический и гематологический отделы, к отделу ВСЭ присоединен паразитологический отдел, которые с 2017 года вошли в состав одного большого микробиологического отдела, создан отдел приемки и регистрации проб, в отдельную структуру выделен виварий. Со 115 человек до 200 увеличилась штатная численность сотрудников.

Основным направлением в деятельности БУ УР «УВДЦ» остается проведение лабораторных исследований в области эпизоотического мониторинга и мониторинга за качеством и безопасностью пищевой, сельскохозяйственной и иных видов продукции. Современное диагностическое оборудование позволяет проводить комплекс диагностических исследований на инфекционные, инвазионные и массовые незаразные болезни животных в максимально короткие сроки различными методами, позволяющими идентифицировать возбудителей на ранних этапах инфицирования животных. Имеется лицензия на работу с микроорганизмами II-IV группы патогенности, выданная Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека. БУ УР «УВДЦ» — единственное в республике ветеринарно-диагностическое учреждение, имеющее возможность выявления таких особо опасных заболеваний, в том числе общих для человека и животных, как африканская и классическая чума свиней, оспа овец и коз, лептоспироз, грипп птиц.

На базе БУ УР «УВДЦ» продолжают эффективно функционировать Испытательный центр и Орган по сертификации,  система внутрилабораторного и внешнего контроля качества испытаний. Систематическому контролю в процессе испытаний подвергаются повторяемость и воспроизводимость результатов испытаний. Для подержания высокого уровня доверия к результатам БУ УР «УВДЦ» ежегодно принимает участие в межлабораторных сличительных испытаниях.

С 2015 г. БУ УР «УВДЦ» осуществляет на базе своего Учреждения на платной основе курсы повышения квалификации для специалистов различных направлений деятельности, имеет бессрочную лицензию, выданную Министерством образования и науки Удмуртской Республики,  на осуществление образовательной деятельности в рамках дополнительного профессионального образования (повышение квалификации и профессиональная переподготовка кадров). По результатам проведения итоговой аттестации слушателям выдается документ о повышении квалификации или профессиональной подготовке. Также БУ УР «УВДЦ» имеет лицензию на осуществление фармацевтической деятельности в области обращения лекарственных средств для ветеринарного применения, выданную Федеральной службой по ветеринарному и фитосанитарному надзору. В соответствии с распоряжением Главного управления ветеринарии Удмуртской Республики БУ УР «УВДЦ» является уполномоченным получателем и хранителем ветеринарных препаратов, поступающих в Удмуртскую Республику за счет средств федерального и республиканского бюджета, организуя централизованный прием, разгрузку, хранение и отпуск ветеринарных препаратов, поступающих для нужд учреждений, подведомственных Главному управлению ветеринарии Удмуртской Республики. В 2017 году организованы дополнительные помещения для увеличения сроков и объемов хранения биопрепаратов. На сегодняшний момент оформляется санитарно-эпидемиологическое заключение на данные помещения, а в дальнейшем будет направлено заявление в  РСХН г.Москвы с целью внесения изменений в лицензию на осуществление фармацевтической деятельности.

Подводя итоги деятельности, П.В. Коротаев подчеркнул, что успех любого предприятия во многом зависит от рабочей команды. В БУ УР «УВДЦ» трудится мощный пласт высококвалифицированных специалистов, знающих свое дело, желающих работать и развиваться. Сегодня уже много сделано, но предстоит сделать еще больше, развивая предприятие в соответствии с современными предъявляемыми требованиями.

По окончании мероприятия руководитель учреждения поблагодарил  коллектив за труд, вручил государственные награды коллегам за высокие производственные показатели.

Главный государственный ветеринарный инспектор Н.Н. Котельников высоко оценил деятельность учреждения, пожелал дальнейших успехов в развитии лабораторной деятельности.

Обзор эпидемиологических подходов к профилактике и борьбе с инфекционными болезнями рыб

Аквакультура быстро становится частью сельского хозяйства во всем мире. На его долю приходится около 44 процентов от общего объема производства рыбы в мире. Такой рост производства достигается, несмотря на то, что аквакультурная среда сталкивается со многими проблемами. Среди проблем, ограничивающих производство, инфекционные заболевания занимают львиную долю, ежегодно вызывая многомиллиардные убытки. Чтобы уменьшить воздействие болезни рыб, необходимо решать проблемы, связанные со здоровьем, на основе научно доказанных и рекомендованных способов.Этот обзор направлен на выявление некоторых из лучших подходов к профилактике и борьбе с инфекционными заболеваниями в аквакультуре. Среди эффективных стратегий профилактики и борьбы вакцинация — одна из ключевых практик. Типы вакцин для рыб включают убитые вакцины, аттенуированные вакцины, ДНК-вакцины, вакцины рекомбинантной технологии и синтетические пептидные вакцины. Способы введения вакцин рыбам включают пероральный, инъекционный или иммерсионный методы. Антибиотики также используются в аквакультуре, несмотря на их побочные эффекты в развитии устойчивости микроорганизмов к лекарствам.Широко используются стратегии борьбы с биологическими и химическими заболеваниями, такие как использование пробиотиков, пребиотиков и лекарственных растений. Меры биозащиты в аквакультуре могут защитить предприятие от определенных болезнетворных агентов, которые отсутствуют в конкретной системе. Меры биобезопасности на уровне фермы включают строгие карантинные меры, дезинфекцию яиц, контроль движения, очистку воды, чистые корма и уничтожение трупов. В заключение, вместо того, чтобы пытаться лечить каждый случай заболевания, рекомендуется применять превентивный подход до возникновения каких-либо вспышек заболевания.

1. Введение

Рыболовство играет большую роль в обеспечении продовольственной безопасности и средств к существованию и является источником дохода и социального развития в развивающихся странах [1]. В последнее время этот сектор привлек большое внимание и быстро растет за счет развития аквакультуры [2]. Новые технологические достижения и возросший спрос на рыбу как источник животного белка являются основными причинами роста отрасли. В связи с расширением отрасли методы культивирования стали более интенсивными для получения более высоких урожаев [3].Производство рыбы в аквакультуре составляет сорок четыре процента от общего объема производства рыбы в 2014 году, что составляет 74 миллиона тонн рыбы на сумму 160 миллиардов долларов. Почти вся рыба, произведенная в аквакультуре, предназначена для потребления человеком [1].

Огромные потери производства в аквакультуре происходят по многим причинам. Среди этих причин болезнь является наиболее серьезным препятствием, которое наносит ущерб средствам к существованию фермеров, приводит к потере работы, снижению доходов и отсутствию продовольственной безопасности. Исследования показали, что почти пятьдесят процентов производственных потерь вызваны заболеваниями, которые более серьезны в развивающихся странах.Это потому, что девяносто процентов аквакультурных компаний находится в развивающихся странах. Ежегодная потеря доходов из-за болезней достигает 6 миллиардов долларов. Например, в Чили только инфекционная анемия лосося стоит 2 миллиарда долларов и привела к потере работы 20 000 рабочих. В Китае, одной из ведущих стран по производству аквакультуры, 15 процентов от общего объема производства рыбы теряется из-за болезней [4].

Чтобы преодолеть потери из-за инфекционных заболеваний в аквакультуре, необходимо действовать в соответствии с каждым ограничением здоровья на основе научно доказанных и рекомендуемых, а также применимых на местном уровне способов.Проблемы аквакультуры, связанные с изменением климата, ограниченными источниками воды и ростом, вызывают необходимость в эпидемиологических подходах для обеспечения безопасности водных животных [5]. Поскольку «профилактика лучше лечения», рекомендуется сосредоточить внимание на предотвращении возникновения заболевания, а не на его лечении [6]. Наилучшими подходами являются использование улучшенных методов животноводства / управления, ограничения передвижения, генетически устойчивое поголовье, диетические добавки, неспецифические иммуностимуляторы, вакцины, пробиотики, пребиотики, лекарственные растительные продукты, биологический контроль дезинфекции воды, антимикробные соединения, дезинфекция воды и контроль движения. в борьбе с инфекционными болезнями рыб [7].

Использование антибиотиков находится под строгим контролем и регулирующими мерами из-за лекарственной устойчивости и проблем, связанных с остатками [8]. В ответ на сокращение использования антибиотиков в рыбе производственные вакцины на протяжении десятилетий играли ключевую роль в борьбе с инфекционными заболеваниями в аквакультуре. Вакцины получают широкое признание из-за отсутствия риска развития лекарственной устойчивости у вакцинированных животных и защиты меньшинства невакцинированных животных из-за коллективного иммунитета [9].

Единый подход к профилактике и контролю за здоровьем аквакультуры не может быть успешным сам по себе.Скорее всего, эффективна комбинация разных стратегий. Создание национального или регионального обмена информацией между фермерами и ответственными сторонами является обязательным. Помимо применения всех этих стратегий, наблюдение за болезнями и наличие чувствительных и специфических диагностических тестов неоценимы для обеспечения здоровья рыб. Этот обзор имеет целью обобщить некоторые из лучших подходов к профилактике и борьбе с инфекционными заболеваниями рыб в среде аквакультуры.

2. Роль вакцин в контроле и профилактике инфекционных заболеваний в аквакультуре

Активизация вакцинации является одним из наиболее важных и, вероятно, приоритетных подходов к профилактике инфекционных заболеваний рыб и борьбе с ними.Лечить многие бактериальные инфекции у водных животных только противомикробными препаратами невозможно [10]. В последнее время произошли улучшения в вакцинации рыб. Некоторые из улучшений включают одновременную иммунизацию большого количества животных и разработку поливалентных вакцин [11]. Вакцинация широко применяется почти для всех сельскохозяйственных животных. В аквакультуре он снижает использование антибиотиков и защищает рыбу от инфекционных заболеваний. Это также позволяет избежать риска лекарственной устойчивости. Защита на уровне запасов благодаря коллективному иммунитету может быть достигнута, и необходимость лицензирования и регистрации новой вакцины намного проще, чем антибиотиков [11].

Есть несколько важных моментов, которые следует принять во внимание перед вакцинацией рыб. Эти соображения включают следующие моменты: виды рыб, подлежащих вакцинации, статус иммунной системы рыб, производственный цикл и жизненный цикл системы аквакультуры, какие болезни необходимо контролировать в аквакультуре, когда эти болезни возникают (сезонное распределение болезней в аквариуме), технологии ведения сельского хозяйства (обработка и механизация), окружающей среды (температура и соленость), стрессовых факторов, питания и рентабельности [12].

2.1. Исторический обзор вакцинации рыб

Вакцинация рыб началась с вакцинации против Aeromonas salmonicida инфекции головорезов в 1942 году [13]. В настоящее время используемые вакцины являются обычным типом вакцин из-за отсутствия современной информации об иммунологии рыб. Доступные вакцины — масляный адъювант, вакцины для инъекций [13]. Геном лосося в настоящее время полностью секвенирован [14], а также геном и несколько других видов рыб. Эти результаты могут привести к разработке новых стратегий разработки вакцин в ближайшем будущем [15].Вакцины против внутриклеточных бактериальных и вирусных патогенов станут одной из серьезных проблем в ближайшие годы. В таких случаях важную роль играет ДНК-вакцина [13].

2.2. Типы вакцин для рыб

Современные вакцины можно разделить на убитые, аттенуированные, ДНК, синтетические пептиды, рекомбинантные векторные, генетически модифицированные и субъединичные вакцины. Вакцины для всего организма показали лучшее преимущество, чем вакцины других типов. Однако большинство вакцин не предотвращают полностью болезнь [10].

В большинстве обычных вакцин антигены являются слабыми, поэтому они не могут вызвать иммунитет у реципиента. Кроме того, их может быть нелегко разработать для предотвращения появления патогенов, наличия антигенного сдвига и антигенного дрейфа, во время уклонения от иммунной системы хозяина патогенными организмами и микробов, которые не могут быть выращены путем размножения in vitro, и разработки этих вакцин. это медленный и трудоемкий процесс, который иногда затрудняет своевременную борьбу с появляющимися и вновь появляющимися патогенами.Вот почему разрабатываются передовые технологии разработки стратегий разработки вакцин для открытия новых типов эффективных вакцин [16].

2.2.1. Убитые вакцины

Убитые вакцины — это обычные типы вакцин, полученные путем уничтожения инфекционного агента и использования его в качестве антигена для индукции иммунного ответа. Большинство коммерческих вакцин, используемых в настоящее время в аквакультуре, представляют собой убитые вакцины. Преимущества этих вакцин заключаются в следующем: они просты в изготовлении, стабильны при хранении, менее дороги и не вызывают проблем с вирулентностью [17].Стратегия приготовления этих вакцин заключается в том, что они большую часть времени нацелены на внешнюю поверхность микроорганизмов или внутренние части, не избегая возможности репликации при введении хозяину [12]. Вирус инфекционного гематопоэтического некроза, A. salmonicida и V. salmonicida — это некоторые заболевания, которые можно предотвратить с помощью убитых вакцин.

2.2.2. Аттенуированные вакцины

Это также обычные вакцины, которые используются у животных и людей, производящих пищу, для предотвращения болезней [18].Их готовят путем многократного лабораторного анализа, физического и химического ослабления организмов, чтобы они потеряли свою вирулентность, не убивая их. Лабораторные исследования показали эффективность живых вакцин для рыб. Они индуцируют слизистый, клеточный и гуморальный иммунитет [19]. Ослабленный организм реплицируется в целевом хозяине без каких-либо клинических признаков [20].

2.2.3. Вакцины на основе дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК)

Это новейший тип вакцин, который является результатом развития молекулярной биологии.Для разработки ДНК-вакцины нет необходимости использовать антиген в качестве вакцины, скорее ген, кодирующий антиген, берется молекулярными методами и может быть введен в качестве вакцины [21]. ДНК-вакцины содержат один или несколько генов патогена. Внутримышечная инъекция этих вакцин обеспечивает немедленную и прочную защиту выращиваемых лососевых от болезней от экономически важных болезней, таких как вирус инфекционного гематопоэтического некроза [22] и вирус вирусной геморрагической септицемии [23], которые контролируются ДНК-вакцинами.

ДНК-вакцина разработана сначала путем идентификации и клонирования защитного антигена от патогена. Например, для некоторых патогенных вирусов рыб, таких как VHSV и IHNV, известно, что защитные антитела действуют против поверхностного гликопротеина вирусов. Следовательно, ген гликопротеина и регуляторные последовательности, обеспечивающие экспрессию в эукариотических клетках, были вариантом для разработки ДНК-вакцин. Для введения в качестве вакцины плазмиду производят в бактериальной культуре, очищают и проверяют качество.После этого процесса ДНК-вакцина будет введена и принята клетками хозяина для производства гликопротеина. Эта ситуация приводит к обнаружению антигена иммунной системой рыб [24].

ДНК-вакцины для рыб хорошо изучены в отношении рабдовирусов лосося IHNV и VHSV. Было обнаружено, что эти вакцины эффективны в аквакультуре лосося для снижения воздействия этих вирусов. Кроме того, две вирусные ДНК-вакцины были также опробованы для лечения других вирусных заболеваний рыб, таких как весенняя вирусемия карпа и рабдовирус хирамы.Несмотря на то, что большинство ДНК-вакцин было разработано для вирусных болезней рыб, ДНК-вакцина пыталась предотвратить бактериальные заболевания почек лосося, вызываемые Renibacterium salmoninarum . Однако эта вакцина оказалась неэффективной [24].

Преимущество ДНК-вакцины заключается в том, что она основана на очищенной плазмидной ДНК, несущей только один ген патогена, что делает ее неинфекционной и неспособной реплицироваться в организме хозяина, отсутствует риск передачи фактического заболевания с помощью вакцина.Вот почему ДНК-вакцины считаются более безопасными, чем обычные вакцины, то есть инактивируют весь вирус с масляным адъювантом или без него или с ослабленным живым вирусом. В этих вакцинах не используются адъюванты для введения, как в обычных вакцинах, что избавляет от поствакцинальных побочных эффектов. Кроме того, все эти ДНК-вакцины не содержат неизвестных примесей, обычно обнаруживаемых в типах вакцин для целого организма [24].

2.2.4. Рекомбинантные векторные вакцины

Рекомбинантные векторные вакцины являются результатом биотехнологических достижений, приготовленных путем взятия только иммуногенных областей патогена и его экспрессии в гетерологичном хозяине.Иммуногенная часть организма взята и передана носителям. Затем белки производятся в больших количествах in vitro, а затем очищаются для использования в качестве вакцины. Простота получения большого количества белков и эффективная экспрессия антигенного белка являются основными факторами, принимаемыми во внимание при выборе вектора. Вирусы инфекционной анемии лосося и инфекционного гемопоэтического некроза были экспрессированы в векторах в качестве вакцины для защиты лосося [10].

2.2.5. Субъединичные вакцины

Когда культивирование организма затруднено, эти вакцины становятся полезными, поскольку они принимают иммуногенную часть и используют ее в качестве вакцины.Субъединичные вакцины безопасны для использования, но их иммуногенная природа очень слабая по сравнению с инактивированными вакцинами для всего организма. Следовательно, необходимы адъюванты для повышения иммуногенности [10].

2.2.6. Генетически модифицированные вакцины

Пассирование организмов in vitro приводит к накоплению геномных мутаций, которые ослабляют организм. Генетически микроорганизмы можно ослабить с помощью молекулярных подходов, которые включают удаление генов, ответственных за его патогенность. Живая аттенуированная вакцина будет воспроизводиться с более низким титром и может стимулировать гуморальный и клеточный иммунитет. Aeromonas salmonicida в лососе можно предотвратить с помощью этих препаратов [10].

2.2.7. Синтетические пептидные вакцины

Эти типы вакцин производятся из коротких последовательностей аминокислот, полученных синтетическим путем, которые действуют как антигены [17]. Их можно использовать в качестве подходящего антигенного сайта. Исследования показали, что вакцинация рыб пептидами менее практична из-за отсутствия понимания иммунного ответа рыб на различные антигены, а также недостаточной активности и, следовательно, требует молекулы-носителя [25].Эти вакцины используются для профилактики инфекционных заболеваний, таких как нодавирус, вирусная геморрагическая септицемия, рабдовирус и бирнавирус [10].

2.3. Методы введения вакцин рыбам

Успешная вакцинация зависит как от разработки защитных вакцин, так и от их правильного использования [20]. Помимо принятия решения о том, какие заболевания необходимо вакцинировать, необходимо четко понимать, как вводить вакцины и когда вводить бустерную дозу (бустерная доза).Для лучшей защиты вакцинацию следует проводить незадолго до контакта с патогеном, чтобы дать иммунитету достаточно времени для развития. Температура воды может быть важным фактором при принятии решения о вакцинации, так же как и размер рыбы, являющейся основной характеристикой, регулирующей развитие иммунной компетентности [26].

2.3.1. Оральная вакцинация

Оральная вакцинация проста в применении и позволяет избежать стресса у рыб. Вакцина вводится в корм во время производства, может быть покрыта гранулами или инкапсулирована [20].Пероральная вакцинация рекомендуется для вторичной или ревакцинации [10]. К недостаткам оральной вакцинации можно отнести то, что она может не обеспечивать единообразную защиту и требует больших доз, а также может иметь дополнительные затраты на инкапсуляцию [26].

2.3.2. Иммерсионная вакцинация

При погружении вакцины наносятся на поверхность рыб. Поглощение антигена происходит через жабры, кожу и боковую линию. Рыбу можно на короткое время окунуть в концентрированный раствор вакцины.Раствор вакцины также можно распылять на рыбу. Иммерсионная вакцинация особенно удобна для мелких рыб и сеголетков, которые нецелесообразно использовать для инъекций; другое преимущество в том, что он вызывает минимальный стресс у рыб; раствор вакцины можно использовать повторно. Его недостатки — трудоемкость, дороговизна резервуаров и необходимость в специализированном оборудовании [10].

2.3.3. Инъекционная вакцинация

Инъекционная вакцинация — это метод доставки, обычно обеспечивающий наилучшую защиту, и единственный выбор для адъювантных вакцин [8].Преимущества инъекции вакцины заключаются в достижении высокой защиты и необходимости относительно минимальной дозы, поскольку правильный расчет дозировки прост и экономичен для более крупных рыб, и можно вводить поливалентную вакцину. Недостатки этого введения заключаются в следующем: непригодность для мелких рыб, образование спаек, стресс у рыб и снижение потребления корма, повреждение во время инъекции, которое может привести к множественной гибели рыб, и не вводить очень молодому стаду из-за развития иммунитета. недостаточно [20].

2.3.4. Коммерчески доступные вакцины в настоящее время

Ряд вакцин одобрен для использования в аквакультуре в настоящее время во всем мире (Таблица 1).

98 [35] Вакцина против инфекционной анемии лосося

98 [37] Вакцина против вируса гемопоэтического некроза

1098 1098 (12)

98 (18) Enter (ERM) вакцина


Sn. Название вакцины Вакцинированные водные виды Профилактика заболеваний Ссылки

(1) Aeromonas salmonicida Bacterin Salmonids (Лосось) 2 [Лосось ] ) Вакцина Arthrobacter Лососевые Болезнь Columnaris [34]
(3) Vibrio Anguillarum-Ordalii Лосось Вибриоз Лососевые Инфекционная анемия лосося [36]
(5) Yersinia Ruckeri Bacterin Лосось Иерсиниоз Лососевые Инфекция гемопоэтический некроз США [38]
(7) Вакцина Edwardsiella Ictalurii Сом Edwardsiellosis [39]
(8) Flavobarex Болезнь [40]
(9) Vibrio anguillarum -Ordalii Радужная форель Вибриоз [35]
(10) Vibrio Vibrio salmonids Вибриоз [41]
(11) Vibrio anguillarum-salmonicida Bacterin Лосось Вибриоз [41]
[41]
Сом Кишечная септицемия [42]
(1 3) Весенняя виремия карпа Карп обыкновенный Весенняя виремия карпа [43]
(14) Вирус герпеса кои (KHV) Карп кои Болезнь, вызванная вирусом герпеса кои [44]
(15) Биопленочные и свободноклеточные вакцины от Aeromonas hydrophila Индийский карп Водянка [45]
(16) Streptococcus ag (группа B) вакцина Tilapia Streptococcosis [46]
(17) Betanodavirus Grouper Болезнь, вызванная вирусом Betanoda [47]
Лосось Кишечная красная болезнь рта [48]
(19) Вакцина Pasteurella Лосось Пастереллез [49]
(20) Вакцина Aeromonas hydrophila Лососевый Motile Aeromonas Septicemia [50]
(21) Carthrodermatitis Carp Ery. [51]
(22) Вакцина против Piscirickettsia salmonis Salmonid piscirickettsiosis. [52]
(23) Вакцина против гаффкемии Омары Гаффкемия [53]
(24) Вакцина против нодавируса Вакцина против нодавируса Вирус морского окуня Вирус морского окуня Сибасс ]
(25) Вакцина против вируса болезни поджелудочной железы Лосось Болезнь поджелудочной железы [55]

3.Использование антибиотиков в аквакультуре

В настоящее время существует общее понимание, что количество антибиотиков для защиты рыб от болезней должно оставаться низким [27]. Интенсивное использование антибиотиков может привести к развитию резистентности. Использование антибиотиков в аквакультуре больше не является вариантом первичного лечения. Несмотря на то, что использование антибактериальных агентов в пищевых животных, включая рыбу, регулируется нормативными актами, особенно в Европе и США, в аквакультуре используется широкий спектр медицинских и ветеринарных ингибиторов [28].Введение противомикробных препаратов в аквакультуре отличается от введения наземным животным. Это различие, в частности, добавление лекарств в воду с кормом или без него, приводит к нарушению микробиоты в окружающей среде [29]. Регулярное использование антибиотиков в рыбном хозяйстве в аквакультуре, которые используются для лечения людей, является рискованным делом. Аквакультурам рекомендуется использовать другие подходы к профилактике, а не прием антибиотиков, но если использование антибиотиков является обязательным в некоторых обстоятельствах, они должны применять только одобренные препараты для рыб [30].

Американское FDA разработало список химикатов и антибиотиков для использования в аквакультуре, который прошел проверку и классифицируется как новые лекарственные препараты для животных с низким приоритетом регулирования. К ним относятся такие соединения, как уксусная кислота, углекислый газ, водород, хлорид натрия или даже чеснок (используемый для борьбы с гельминтами и морскими вшами у морских лососевых), лук (используемый для лечения внешних паразитов ракообразных) и лед, используемый для снижают скорость метаболизма рыб во время транспортировки [31].

3.1. Стратегии применения антибиотиков в аквакультуре
3.1.1. Лекарственный корм (пероральный прием)

Лечебный корм — один из успешных методов введения лекарств в аквакультуре. Тщательный прием лекарств необходим, потому что некоторые из причин заболевания, например стресс, приводят к неудачам лечения. Рыбы могут подвергаться стрессу в случаях повышенной плотности рыбы, плохого или неадекватного питания, плохого качества воды, заражения паразитами и обращения с ними [30].

3.1.2. Инъекция

В случае тяжелых инфекций рекомендуется использовать инъекции для более эффективного действия, чем лечебный корм. Рекомендуется использовать эту технику введения для ценных особей, таких как декоративные рыбы, потому что это трудозатратно и требует много времени. Инъекция обеспечивает немедленный эффект, быстро достигая крови. Места инъекции включают внутрибрюшинную полость и внутримышечные участки [32].

3.1.3. Immersion

Этот тип стратегии введения рекомендуется для лечения внешних инфекций, а не системных инфекций.Он имеет множество недостатков: для него требуется отдельный резервуар, для него требуется больше антибиотиков, чем для перорального приема, и требуется строгое регулирование объемного соотношения воды и лекарственного средства [32].

4. Использование пробиотиков в аквакультуре

Повышение естественной защиты рыб — одна из исследуемых областей со многими полезными преимуществами [56]. Основной поиск был связан с веществами, которые можно было бы включать в корм и доставлять рыбе перорально, но другие можно вводить вместе с вакцинами.Многие из первых сообщений о коммерческих преимуществах не были подтверждены исследованиями механизма действия, и доказательства участия иммунной системы не могли быть подтверждены. Более поздние исследования теперь сопровождаются данными о влиянии лечения на ряд иммунных биоанализов, и, хотя механизм действия неизвестен, похоже, что существует некоторая форма иммуномодуляции. Каким бы ни было их действие, иммуностимуляторы прямо или косвенно усиливают специфические или неспецифические защитные механизмы, или и то, и другое [57].

Борьба с биологическими заболеваниями в аквакультуре — один из лучших подходов к борьбе с инфекционными заболеваниями [57]. Пробиотики представляют собой бактериальную культуру штаммов бактерий, непатогенных для рыб [58]. Другое определение пробиотиков — это живой микроорганизм, вводимый хозяевам для развития защитного иммунного статуса. После введения рыбам они размножаются, занимая кишечник рыб, они помогают нормальной микрофлоре и поддерживают микробный баланс в организме хозяина [59].

При выборе подходящего штамма пробиотиков следует учитывать несколько критериев. Следует учитывать следующие характеристики: происхождение хозяина, безопасность штамма, выработка антимикробных веществ, способность стимулировать иммунный ответ хозяина или эффективная конкуренция с патогенами за участки адгезии слизистой оболочки кишечника. Одним из наиболее распространенных способов получить источник этих бактерий является выполнение тестов на антагонизм in vitro, в которых патогены подвергаются воздействию пробиотиков-кандидатов или их внеклеточных продуктов в жидкой и / или твердой среде [7].

Многие микроорганизмы были признаны пробиотиками в аквакультуре. Bacillus subtilis , Lactobacillus acidophilus , Lactobacillus sakei и Shewanella putrefaciens — несколько из них. Их можно использовать для рыб и других культивируемых животных, чтобы предотвратить болезни и способствовать увеличению веса. Пробиотики можно добавлять в корм или добавлять непосредственно в воду. Другая стратегия администрирования — инкапсуляция. Инкапсуляция помогает улучшить питательную ценность и правильную доставку микроба к хозяину без потерь живых организмов [60].

4.1. Стратегии введения пробиотиков

Пробиотики можно добавлять в корм в резервуаре для воды. Было проведено множество исследований, чтобы рекомендовать лучший способ введения, оптимальную дозу и необходимые технические решения, особенно для сохранения пробиотиков в сухих гранулах [60].

4.1.1. Диетическое управление

Одним из наиболее важных и, вероятно, широко применимых способов введения пробиотиков является их добавление непосредственно в кормовые гранулы.Пробиотики, используемые для включения в рацион, в основном находятся в форме спор. Во время добавления пробиотиков необходимо постоянно проверять жизнеспособность, чтобы подтвердить повышенный защитный иммунитет рыб. Их можно добавлять в виде лиофилизированных культур, которые можно смешивать с липидами в качестве подкормки корма [60].

4.1.2. Микроинкапсуляция

Другой широко используемой стратегией введения пробиотиков является применение процесса, называемого инкапсулированием. В этом процессе клетки организма с высокой плотностью инкапсулируются в коллоидный матрикс с использованием альгината, хитозана, карбоксиметилцеллюлозы или пектина для физической и химической защиты микроорганизмов [61].Сосредоточение внимания на применении в аквакультуре позволило эффективно инкапсулировать клетки Shewanella putrefaciens в альгинате кальция, демонстрируя выживаемость инкапсулированных пробиотических клеток через желудочно-кишечный тракт единственного (Solea senegalensis) . Инкапсуляция в альгинатных матрицах защищает бактерии от низкого pH и пищеварительных ферментов [7].

4.1.3. Иммобилизованные пробиотики

Захват клеток, высвобожденных в гелевой матрице из альгинатов, вокруг основного вещества, известен как стенка иммобилизации.Иммобилизация пробиотиков — это новая технология, широко используемая в молочной и фармацевтической промышленности в лабораторных условиях. В частности, сообщалось, что иммобилизация клеток дает много преимуществ для продукции биомассы и метаболитов по сравнению со свободными клеточными системами, такими как высококлеточные [60].

5. Использование пребиотиков и лекарственных растений в аквакультуре

Другими важными усилителями иммунитета в аквакультуре являются пребиотики. Их называют пищей для пробиотиков. Они устойчивы к атакам эндогенных ферментов и, следовательно, могут достигать места действия, способствуя размножению микрофлоры кишечника.Некоторые из пребиотиков, которые в настоящее время используются в кормах для животных, — это маннанолигосахариды (MOS), фруктоолигосахариды (FOS) и смешанный олигодекстран [62].

Применение растительных продуктов в аквакультуре для борьбы с болезнями — одна из многообещающих альтернатив антибиотикам. Они стимулируют иммунную систему рыб, избегают стресса и действуют как антибактериальные и противопаразитарные средства благодаря своим активным химическим ингредиентам [63]. Их можно вводить, извлекая их активный компонент, или весь растительный материал можно добавлять в аквариум напрямую.В зависимости от типа используемой части растения и сезона сбора растительного материала их активный ингредиент может варьироваться, поэтому необходимо знать растение и сезон сбора. Лекарственные растения можно вводить рыбам путем инъекции перорально, а также путем погружения в воду или ванн [64]. Введение извлеченного материала — эффективный метод для крупной рыбы [65].

6. Меры биозащищенности в аквакультуре

Биозащита — это любые меры управления, направленные на предотвращение заноса болезнетворных агентов на объекты аквакультуры [66].Меры биобезопасности на уровне фермы включают применение комбинации мероприятий, более или менее, которые включают строгие карантинные меры, санитарию оборудования, дезинфекцию яиц, контроль движения, водоподготовку, использование чистых кормов, надлежащую утилизацию мертвых. Эти протоколы следует применять при вводе нового поголовья, а также применять их для уменьшения количества патогенов и предотвращения передачи патогенов из одного стада в другой. Большинство болезней аквакультуры можно преодолеть путем тщательного соблюдения мер биобезопасности.Снижение плотности посадки — один из наиболее важных подходов к борьбе с болезнями рыб в аквакультуре. Низкая плотность посадки — очень полезная мера первого шага, когда вспыхивают инфекции эктопаразитов, наряду с увеличивающимся потоком воды, для достижения большего эффекта промывки паразитов. Интересный отчет о плотности посадки и благополучии рыб см. В [67].

6.1. Карантин и ограничение передвижения в аквакультуре

Карантин удерживает водных животных, завезенных извне и состояние здоровья которых неизвестно до попадания в стадо.В это время необходимо строгое наблюдение за животными и использование соответствующих диагностических тестов [68]. Продолжительность карантина может составлять от пятнадцати дней до трех месяцев [69]. После правильного диагноза рассматриваемого заболевания следует назначить лечение эффективными агентами в течение соответствующего периода времени. Профилактическое лечение может подавить развитие клинических признаков, а неправильное использование антибиотиков приведет к развитию антибактериальной устойчивости [70].

6.2. Дезинфицирующие средства и пестициды в аквакультуре

Дезинфекция включает использование физических или химических агентов для удаления микроорганизмов, как правило, на неодушевленных предметах.В аквакультуре дезинфицирующие средства также могут включать соединения, используемые для уничтожения микроорганизмов, обитающих на поверхности икры рыб. Эти агенты используются на объектах по выращиванию водных животных как часть протоколов биобезопасности для контроля распространения патогенов водных животных [71]. Правильная очистка и осушение прудов может стать феноменальным средством борьбы со многими болезнями рыб в аквакультуре. Пруд с высококачественной чистой и хорошо аэрированной водой важен для выращивания здоровой рыбы и критически важен для тех видов, которые обитают в олиготрофных водах, таких как лососевые [72].

Соединения четвертичного аммония, формальдегид, перекись водорода, изопропиловый спирт, глюкопротамин, хлор-йод и йодофор в основном используются в качестве дезинфицирующего средства в аквакультуре. Помимо того, что они токсичны для рыб, соединения четвертичного аммония эффективны для уничтожения организмов в неодушевленных предметах. Также можно использовать хлор, но его необходимо соответствующим образом нейтрализовать, чтобы избежать гибели рыбы. Оборудование, продезинфицированное йодсодержащими соединениями, также необходимо промыть перед использованием, поскольку они могут быть токсичными [73].

6.3. Эпиднадзор за болезнями рыб в аквакультуре

Любой план здоровья водных животных или разработка политики в отношении здоровья водных животных невозможны без качественных данных о здоровье. Эти данные могут быть использованы для контроля заболеваний, карантина и сертификации здоровья, что может быть достигнуто путем проведения надзора за водными животными [73]. Эпиднадзор во избежание заноса болезни является важным элементом любой стратегии биобезопасности для определения возможного пути занесения болезни на водные предприятия и выявления появления нового заболевания, что обеспечит реализацию стратегий контроля до того, как патоген станет широко распространенным [67 ].Важно регулярно проводить эпиднадзор, чтобы снизить риск распространения патогенов [67]. Надзор за болезнями должен быть неотъемлемой и ключевой частью всех государственных служб здоровья водных животных [68].

6.3.1. Пассивное наблюдение

Данные, собранные для других целей, можно использовать для определения состояния здоровья водных животных и для планирования соответствующих мер по снижению заболеваемости. Данные могут быть получены из лабораторий, выездов на места, исследовательских проектов, от фермеров и аквакультурников.Пассивное наблюдение полезно для раннего выявления возникающих заболеваний. Его ограничение состоит в том, что он не позволяет оценить заболеваемость и распространенность, и его нельзя использовать для демонстрации отсутствия болезни [67].

6.3.2. Активное наблюдение

Активное наблюдение включает в себя опросы, чтобы узнать статус конкретного заболевания. Свидетельства болезни в определенной популяции и, в некоторых случаях, предоставляют данные, подтверждающие, что указанная популяция свободна от определенного заболевания.Результаты активного эпиднадзора могут быть предвзятыми, если они не разработаны и не проанализированы должным образом. Соответствующий анализ может предоставить достоверные измерения заболеваемости и распространенности заболевания в конкретной области [73]. Его преимущества включают более качественную информацию, более быстрый и дешевый сбор информации, чем пассивное наблюдение [74].

7. Важность диагностических тестов в профилактике инфекционных заболеваний в аквакультуре и борьбе с ними

Диагностика водных животных по клиническим признакам практически невозможна, потому что рыбы живут в воде и двигаются быстро, что делает невозможным их тщательную визуализацию и осмотр на предмет каких-либо клинических отклонений. .Это делает быстрые и точные методы диагностики важными для профилактики инфекционных заболеваний и борьбы с ними. Диагностические тесты для выявления болезней рыб включают обычные микробиологические, иммуносерологические и молекулярные методы. Быстрые и точные молекулярные методы стали важными диагностическими инструментами. Иммуноанализы с боковым потоком, ДНК-микрочипы, белки или гликаны также могут быть иммобилизованы на твердой поверхности микроматрицы для зондирования различных целевых молекул, меченных флуоресценцией [75].При диагностике болезней рыб обнаружение патогена в образце ткани проводится путем взятия образцов со смертельным исходом, а не выявления антител, которые являются индикатором конкретного заболевания, но в случае ценных рыб, таких как декоративные рыбы, рекомендуется отбор образцов без смертельного исхода [ 8].

Не ожидается, что диагностические тесты будут на 100% чувствительными и специфичными. Чтобы избежать ошибочной классификации, протоколы диагностических тестов следует выбирать и интерпретировать в зависимости от их эффективности в условиях использования.В контексте программ биобезопасности диагностические тесты используются для выявления появления и отслеживания распространения инфекционных агентов в рыбных запасах. Существует четыре основных связанных с биобезопасностью целей, для которых обычно используются диагностические тесты: продемонстрировать отсутствие инфекции в аквакультуре для получения или поддержания сертификата отсутствия инфекции, проверить рыбу перед доставкой в ​​принимающее предприятие, выявить зараженную рыбу уже на ранней стадии. возможно в период карантина, а также для подтверждения подозрительного или клинического случая [76].

8. Проблемы профилактики и борьбы с болезнями рыб

В относительном выражении будет справедливо сказать, что борьба с инфекционными заболеваниями в аквакультуре сложнее, чем борьба с болезнями наземных животных, из-за окружающей среды, в которой обитает рыба, и характера рыб. сами по себе, потому что рыбу нельзя наблюдать достаточно близко, как это делаем мы за наземными животными, окружающая среда может способствовать быстрой передаче болезней, рыбу нелегко поместить в кэш без стресса, они часто собираются группами, а болезнь часто трудно обнаружить и охарактеризовать [5].Другой важной задачей является диагностика болезней рыб; При диагностике болезней наземных животных интерес представляет отдельное животное. Сценарий отличается при расследовании болезней аквакультуры из-за характера воды, в которой обитает рыба. Болезнь может передаваться быстро, и весь аквариум может быть источником болезни для здорового поголовья. В этом случае интересующей единицей является не отдельная рыба, а весь аквариум, который необходимо исследовать и диагностировать. Образцы следует собирать не только у рыб, но и из воды для измерения важных характеристик, таких как pH, состояние дна почвы и мутность, что затрудняет диагностику водных животных [76].

9. Заключение

Совершенно очевидно, что аквакультура — это огромная отрасль, действующая во всем мире и быстрорастущая. Этот сектор сталкивается со многими сложными и многогранными ограничениями и проблемами. Среди этих проблем инфекционные заболевания составляют львиную долю, ежегодно вызывая убытки в миллиарды долларов. Поэтому рекомендуется стратегия предотвращения и контроля планирования проблем, основанная на общепринятых принципах и применимых на местном уровне стратегиях. Эти стратегии должны быть сосредоточены на предотвращении развития инфекции, а не на лечении больных стада.Как правило, использование комбинации иммунопрофилактики, мер биобезопасности и использования только официально утвержденных антибиотиков может привести к максимальной защите здоровья рыб в аквакультуре.

Конфликт интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов в отношении публикации этой статьи.

Рептилии и риск инфекционных заболеваний

Рептилии, такие как змеи, черепахи, черепахи и ящерицы, стали популярными в качестве домашних животных.Их привлекательность в том, что они красочные, тихие и, как правило, за ними легко ухаживать. А их необычный внешний вид очень нравится маленьким детям. Однако они требуют осторожного обращения, поскольку они переносят ряд микробов, которые могут привести к заболеваниям человека (особенно у маленьких детей, беременных женщин, пожилых людей и людей с серьезными заболеваниями, такими как рак).

Диапазон рептилий, которых сегодня можно добыть в Ирландии, очень велик, включая змей, ящериц (хамелеоны, игуаны, гекконы, бородатые драконы, сцинки), черепах, черепах, черепах (пресноводных черепах).Можно даже получить более крупных змей и крокодилов (крокодилов и аллигаторов), но эти крупные рептилии — опасные животные, и ни один уважаемый зоомагазин не станет сознательно продавать таких животных в семейную обстановку.

Все рептилии являются переносчиками различных микробов, включая бактерии, вирусы, паразитов и червей. Многие из них могут передаваться семье владельцев рептилий. К наиболее значительным из них относятся:

Salmonella: Salmonella обычно встречается у всех видов рептилий и может передаваться от рептилий к человеку, когда что-то зараженное фекалиями рептилий попадает в рот.Например, младенцы могут заразиться сальмонеллой, выпив из бутылочек смеси, загрязненной фекалиями рептилий / рептилий. Инфекция сальмонеллы вызывает диарею, головную боль, жар и спазмы желудка и может привести к сепсису (заражению крови). Обезвоживание может быть серьезным. В 2008 году было зарегистрировано 449 случаев сальмонеллеза, пятнадцать из которых имели недавний контакт с рептилиями. Девять из этих пятнадцати заболевших были моложе одного года.

Ботулизм: Ботулизм — серьезное и опасное для жизни заболевание, вызываемое токсином, выделяемым бактерией Clostridium , вызывающим паралич и смерть. Clostridium широко встречается в окружающей среде, включая почву и грязь, поскольку споры и животные, живущие близко к земле, обычно заражены клостридиями. Clostridium обычно заражает рептилий, особенно водных рептилий. У взрослых и детей старшего возраста есть ряд бактерий, которые разрастаются через споры, но маленькие дети в возрасте до одного года еще не разработали эту защиту. Недавно было признано, что контакт с черепахами или корм для черепах был вероятной причиной двух случаев детского ботулизма в Ирландии.Соответственно, HPSC сообщает, что рептилий (особенно черепах) не являются подходящими домашними животными для маленьких детей и не должны содержаться в семьях, в которых есть дети в возрасте до пяти лет. Кроме того, если у вас есть черепахи и вы посещаете домохозяйство, в котором есть дети до пяти лет (и особенно домохозяйства с младенцами в возрасте до одного года), вы должны мыть руки сразу после контакта с черепахами или их водой и снова при входе в дом, в котором находятся маленькие дети .

Другие инфекции: болезни, такие как кампилобактериоз (кишечная инфекция), лептоспироз (заболевание печени), трихинеллез (заболевание мышц, нервной системы, сердца и легких), связаны с содержанием рептилий, хотя большинство из них поддаются лечению. , некоторые могут быть очень серьезными. Тем не менее, риск для большинства людей, содержащих рептилий, не представляет значительного риска для здоровья, если соблюдается надлежащая гигиена. У большинства людей низкий риск заражения сальмонеллой в результате контакта с рептилиями, и этот риск можно снизить, следуя приведенным ниже советам.

  • Рептилий не следует содержать в качестве домашних животных в доме, где есть дети в возрасте до пяти лет.
  • Считается, что все рептилии заражены одной (или многими) из перечисленных выше бактерий).
  • Беременным женщинам, пожилым или ослабленным взрослым или людям с ослабленным иммунитетом (например, больным раком, ВИЧ / СПИДом, людям с числом CD4 менее 200) следует избегать любых контактов с рептилиями.
  • После работы с рептилией всегда мойте руки горячей мыльной водой.
  • Всегда мойте руки после прикосновения к резервуарам и оборудованию для рептилий, корму для рептилий и фекалиям рептилий.
  • Рептилии не должны находиться на кухне, в столовой и других местах, где готовится пища.
  • По возможности держите рептилии в аквариуме или клетке.
  • Вымойте горячей водой все поверхности, с которыми рептилия контактировала.
  • Мойте рептилию только в собственном тазу. Никогда не используйте раковину или ванну. Всегда надевайте одноразовые перчатки при чистке резервуаров, клеток или оборудования.Сточные воды и фекалии следует сбрасывать в унитаз или в канализацию.
  • Не ешьте, не пейте и не курите при работе с рептилиями, резервуарами для рептилий или снаряжением для рептилий. Не целуйте рептилий, не делитесь с ними едой или питьем.
  • Вымойте любую одежду, которая соприкасалась с рептилией. Используйте теплую или горячую стирку.
  • Дети старшего возраста, имеющие дело с рептилиями, не должны подносить руки ко рту, пока они не помоют руки. Дети также не должны подносить предметы, которых коснулась рептилия, ко рту.
  • Рептилий не следует содержать в детских учреждениях или яслях; они не подходят для маленьких детей.
  • Следуйте советам экспертов по вопросам кормления и благополучия (например, окружающей среды) вашей рептилии, поскольку стресс для животного может привести к выделению сальмонеллы и других патогенов.
  • Обратитесь к местному ветеринару или ветеринару-специалисту по рептилиям для получения дополнительной информации о рептилиях.
  • Дополнительную полезную информацию можно получить в Ветеринарной службе Совета округа Уотерфорд.

Доступна дополнительная информация о рисках инфекционных заболеваний, исходящих от домашних и других животных.

Пространственные соображения для содержащихся в неволе змей

https://doi.org/10.1016/j.jveb.2018.12.006Получить права и контент

Аннотация

Змеи в неволе обычно включают небольшие вольеры с размерами, которые не позволяют пассажирам принимать прямые позы тела . В частности, коммерческий сектор, хобби и домашние животные обычно используют небольшие виварии и стеллажи, хотя зоопарки и другие объекты также обычно содержат по крайней мере некоторых змей в примерно одинаковых условиях.Змеи, содержащиеся в неволе, могут быть единственными позвоночными животными, политика управления которыми обычно включает лишение способности и вероятной потребности в благополучии свободно вытянуть тело до его естественной полной длины. В этом отчете мы представляем исходную информацию, касающуюся некоторых соответствующих физических и поведенческих характеристик змей, обсуждаем распространенные верования или фольклорное разведение и их значение для благополучия животных, а также факторы, касающиеся стресса, его проявления и измерения, а также предоставляем критерии для оценки содержания в неволе. змея благополучие.В рамках этого обзора мы также провели компонент наблюдений с участием содержащихся в неволе змей и сообщили, что в течение 60-минутных периодов наблюдения 65 змей 24 (37%) приняли прямолинейные или почти прямолинейные позы (неподвижные 42%; подвижные 37%). Из 31 наблюдаемого вида змей 14 (45%) приняли прямолинейные или почти прямолинейные позы. Эктоморфологические ассоциации, нормальное поведение и врожденные влечения позволяют сделать вывод, что змеи, даже так называемые оседлые виды, используют значительное пространство как часть своего нормального образа жизни.Мы пришли к выводу, что будущая политика разведения змей потребует сдвига парадигмы от ошибочной системы убеждений к признанию больших пространственных потребностей этих рептилий.

Ключевые слова

змея

пространство

стресс

ограждение

плен

животноводство

Рекомендуемые статьиЦитирующие статьи (0)

© 2018 Авторы. Опубликовано Elsevier Inc.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.