Эффективность дезинфекционных мероприятий проверяют: Качество и эффективность дезинфекции. Дезинфекция и стерилизация в лечебно-профилактических учреждениях

Разное

Содержание

Качество и эффективность дезинфекции. Дезинфекция и стерилизация в лечебно-профилактических учреждениях

Качество и эффективность дезинфекции

Контроль качества дезинфекции проводится для оценки ее эффективности в прерывании механизмов передачи инфекции. Он проводится либо специальной службой лечебно-профилактического учреждения, либо сотрудниками дезинфекционных станций.

Различают три способа контроля дезинфекционных мероприятий:

  • Визуальный
  • Химический
  • Бактериологический

При визуальном контроле выясняется санитарное состояние объекта, полноценность и своевременность их выполнения согласно стандартам.

Химический контроль направлен на определение правильности приготовления дезинфицирующих средств, если они изготавливаются или разбавляются непосредственно перед использованием или хранятся. При этом отмечают даты изготовления или разбавления, кем приготовлено и какая концентрация активного вещества содержится в дезинфицирующем средстве.

Бактериологический контроль заключается в заборе смывов с дезинфицированных не позднее 1 часа назад поверхностей. После чего выполняется бактериологическое исследование смывов с целью выявления возбудителей инфекций и их количества. На основании полученных данных делаются наиболее объективные выводы о качестве работы дезинфицирующей службы.

Дезинфекция и стерилизация в лечебно-профилактических учреждениях

Дезинфекция в лечебно-профилактических учреждениях проводится практически всеми сотрудниками, причастными к лечебно-профилактической работе от санитаров до врачей.

Замечание 1

Только комплексный и коллективный подход помогает в предотвращении эпидемического процесса или передачи инфекции в случае его возникновения. Одним из ключевых моментов в уничтожении инфекции в лечебно-профилактических учреждениях – стерилизация.

Определение 1

Стерилизация – комплексное мероприятие, направленное на полное освобождение вещества, помещений или объектов от микроорганизмов, в том числе находящихся в вегетативных и споровых патогенных и непатогенных форм путем физических и/или химических воздействий.

Стерилизации подвергаются все изделия медицинского назначения, контактирующие с биологическими жидкостями или телом пациента. Обработка этих предметов осуществляется в три этапа:

  • Дезинфекция
  • Предстерилизационная обработка
  • Стерилизация

На первом этапе проводится механическая, химическая и физическая обработка предметов с целью уничтожения и удаления возбудителей и их токсинов.

После чего проводится очистка для удаления белковых и жировых и других загрязнений в том числе лекарств и дезинфицирующих веществ. Предстерилизационная обработка проводится ручным или механическим (при помощи специальных машин) способом.

Замечание 2

В последнее время появились средства, позволяющие проводить одновременно дезинфекцию и предстерилизационную обработку.

Далее непосредственно перед процессом стерилизации проводится контроль качества подготовки к ней. Обязательно при этом контролируется наличие остатков крови при помощи азопираминовой пробы и остатков щелочных компонентов моющих средств.

Затем проводится собственно стерилизация, ее методы делятся на четыре группы:

  • Термические (паровые, воздушные, гласперленовые стерилизаторы)
  • Химические (стерилизация в растворах или газах)
  • Радиационные (стерилизаторы, излучающие радиацию)
  • Плазменные (самый современный способ применения для стерилизации низко- или высокотемпературной плазмы)

Замечание 3

Способ стерилизации подбирается с учетом материалов, конструкции и необходимости длительного сохранения стерильности предмета.

Наиболее широко в нашей стране используются термические способы стерилизации из-за их доступности.

Контроль качества и эффективности дезинфекции и стерилизации

Для профилактики инфекционных заболеваний в помещениях осуществляют контроль качества дезинфекции. Мероприятия по дезинфекции проводятся визуальными, химическими и бактериологическим методами. Нередко этими методами пользуются одновременно.


Метод визуального контроля определяет своевременность дезинфекции, имеющиеся основания, спектр мероприятий и объем работ по стерилизации предметов, объектов и помещений.

Химический контроль дезинфекции и стерилизации выбирают, когда нужно определить содержание веществ и соответствие инструкции. В данном методе важно установить, когда и кем был приготовлен раствор, определяют качество стерилизации поверхностей эпидемиологически опасных предметов – посуды, мебели, помещения, бытовых предметов, которые следует увлажнить во время уборки хлорсодержащими растворами.

Бактериологический контроль качества стерилизации и дезинфекции предполагает снятие проб с бытовых предметов, предметов одежды, постельного белья, мебели и поверхностей. Данный метод специалистами осуществляется без предупреждения рабочего персонала. Его цель — контроль эффективности дезинфекции и всех мероприятий, проводимых в дошкольных, школьных, медицинских и общесвтенных учреждениях.

Контроль качества дезинфекции осуществляется комиссией специалистов санитарно-эпидемиологической станции в установленные сроки, либо без предупреждения. Цель таких мероприятий – свести к минимуму и предотвратить возникновение очагов опасных инфекционных заболеваний среди населения.

Эти мероприятия проводятся в три этапа:

1. проверка уровня чистоты поверхностей, увлажненность и защита приборов;
2. смотр режима стерилизации включает в себя учет температуры раствора, равномерности увлажнения поверхностей, качество распыления средства, его концентрацию и специфику и проводится с привлечением специалистов;
3. данный этап предполагает проверку качества дезинфекции со вниманием на специфику производства, определенных особенностей и остановки предприятия, где осуществляется контроль.

Опыт проведения контроля качества стерилизации и дезинфекции показывает, что такие мероприятия позволяют избежать и предотвратить непоправимые ситуации, которые могут угрожать жизни и здоровью населения. Поэтому они являются обязательными для поликлиник, предприятий общепита и детских учреждений.

Контроль качества дезинфекционных мероприятий | Эпидемиология

Для оценки качества дезинфекции как противоэпидемического мероприятия используются следующие критерии: а) своевременность проведения дезинфекции; б) полнота охвата дезинфекционными мероприятиями; в) соблюдение методики проведения дезинфекционных мероприятий; г) качество средств дезинфекции.

Качество заключительной дезинфекции оценивается по результатам контроля, который осуществляется соответствующими подразделениями центров дезинфекции и стерилизации и центров гигиены и эпидемиологии. При этом контроль должен быть внезапным, независимым и объективным.

В течение длительного времени дезинфекция оценивалась как своевременная, если она была проведена после эвакуации больного не позже 6 часов в городах и не позже 12 часов в сельской местности. Однако дезинфекционная практика показала, что эти сроки, с одной стороны, трудно объективно учесть, а с другой стороны, они часто оказывались невыполнимыми (например, при госпитализации больного в вечернее время). Так, по данным Л.И.Карпенко, в день изоляции заболевшего ребенка из детского дошкольного учреждения выполнено только 12,7% заключительных дезинфекций. На второй день и позже изоляции заключительная дезинфекция проведена в 87,3% детских дошкольных учреждений. Исследования В.Г. Катькалова, показывают, что в первые 6 часов после получения заявки заключительная дезинфекция проводилась в 60% очагов острых кишечных инфекций.

С учетом этого организационно оправданным и эпидемиологически приемлемым является выполнение заключительной дезинфекции в эпидемических очагах в течение суток с момента госпитализации или изоляции больного из организованного коллектива. Разумеется, что эти сроки не могут быть оправданными при возникновении очагов карантинных и особо опасных инфекций, в которых заключительная дезинфекция должна проводиться тотчас же после госпитализации больного.

Похожие статьи:

Примите к сведению

Информация на этом сайте представлена в справочных и образовательных целях и не должна быть использована как инструкция по лечению. В любых случаях необходимо консультироваться у врача.

Эпидемиологическая оценка и эффективность дезинфекционных мероприятий в новых социально-экономических условиях

1. Агапова Е.Д. Бактериологический спектр и анализ резистентности к антибактериальным препаратам у реанимационных больных / Е. Д. Агапова, А.Н. Литвинцев // Журн. Актуальные вопросы интенсивной терапии. Иркутск, 1997. — С.22 — 27.

2. Акатов А.К. // Стафилококки. М., 1983. — 258 с.

3. Акбаров А.А. Результаты централизации стерилизационных пунктов и отделений в Кашкадарьинской области / А.А. Акбаров, Х.М. Мустафов, Н.А. Курбанов // Мед. Журн. Узбекистана. 1986. — №5. -С.76-78.

4. Акимкин В.Г. Структура внутрибольничных инфекций в крупных госпиталях // Военно-медицинский журнал. 1997. — Том CCCXYII, №2.-С. 42-46.

5. Акимкин В.Г., Галкин В.В. Обеззараживание отходов в лечебно-профилактических учреждениях //Справочник госпитального эпидемиолога. М., 1999. — С. 297 — 307.

6. Алексеев А.Н. Принципиальная схема интеграции способов борьбы с переносчиками болезней и кровососами //Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 1988. — №1. — С. 3 — 9.

7. Апретов Ю.Н. Пути усиления санитарно-противоэпидемического режима в лечебно-профилактических учреждениях Удмуртской АССР / Ю.Н. Апретов, Ш. Г. Хайрулин // Гигиена и санитария.1990. -№10. -С. 89.

8. Афиногенов Г.Е. Предупреждение формирования лекарственной устойчивости популяций бактерий применением биологически-активных веществ / Г.Е. Афиногенов, Т.В. Копылова, Н.И. Владимиров. // Антибиотики. — 1984. — №6. — С. 417 — 420.

9. Афиногенов Г.Е. Антисептики в хирургии / Г.Е. Афиногенов, Н.П. Еринов. // JL: Медицина, 1987. 143 с.

10. Афиногенов Г.Е. Роль полимерных поверхностно-активных веществ в профилактике и лечении раневой инфекции / Г.Е. Афиногенов, Т.В. Копылова, К.Б. Грабовская // Госпитальная эпидемиология. Сб. науч. трудов. Д., 1989. — С. 89 — 92.

11. Басов А.Н. Об организации центральной стерилизационной лаборатории. // Здравоохранение РФ. 1968. — №6. — С.20 — 22.

12. Белотелова Е.С. Организация центральной стерилизационной в многопрофильной больнице. / Е.С. Белотелова, Н.В. Ушакова. // Медицинская сестра. 1982. — №3. — С.31-33.

13. Беляев Е.Н. Роль санэпидслужбы в обеспечении санитарно-эпидемиологического благополучия населения Российской Федерации. М.: Информационно-издательский центр Госкомитета санитарно-эпидемиологического надзора РФ, 1996. — 416 с.

14. Беляев Е.Н. Научные основы стратегии развития санитарно-эпидемиологической службы в обеспечении здоровья населения в современных условиях //Автореф. дисс. д.м.н. М., 1996. — 56 с.

15. Беляев Е.Н. Санитарно-эпидемиологическая обстановка в России и роль центров санитарно-эпидемиологического надзора в медико-экологическом районировании, региональные проблемы здоровья населения России //В.Д. Беляков. М.: ВИНИТИ, 1993. — С.21 — 27.

16. Беляев Е.Н. О санитарно-эпидемиологической обстановке в России и мерах по ее стабилизации. М., 1994.

17. Беляев Е.Н. Основные итоги и перспективы реализации Закона РСФСР «О санитарно-эпидемиологическом благополучиинаселения» /Здоровье населения и среда обитания. М., 1995. — №2.- С. 2 — 15.

18. Беляков В.Д. / В.Д. Беляков, А.П. Колесов, П.Б. Остроумов.// Госпитальная инфекция. JL: Медицина, 1976. — 232 с.

19. Беляков В. Д, Дегтярев А.А., Иванников Ю.Г. Качество и эффективность противоэпидемических мероприятий. — JL: Медицина, 1981.-300 с.

20. Беляков В.Д., Лысенко А.Я., Потапов А.И. и др. Условия среды и здоровье населения //В кн.: Региональные проблемы здоровья населения. М., 1993. — С. 43 — 72.

21. Беляков В.Д., Яфаев Р.Х. Эпидемиология. М., 1989. — 416 с.

22. Блохин А.Б. О совершенствовании системы управления и структуры учреждений государственной санитарно-эпидемиологической службы //Здравоохранение РФ. 1997. — №6. — С. 53.

23. Бойко Л.С. Отдельные аспекты выполнения плана мероприятий по реформе дезинфекционных подразделений //Дезинфекционное дело.- 1996.-№3.-С. 16-17.

24. Бонашевская Т.И., Фельдман Ю.Г., Шестакова Л.А. и др. Комплексный подход к оценке состояния здоровья детей г. Москвы в районах с разным уровнем загрязнения атмосферного воздуха //Гигиена и санитария. 1992. — № 11-12. — С. 24 — 28.

25. Брико Н.И., Лыткина И.Н., Шулакова Н.И., Миронова В.Ф. Эпидемиологические проявления и перспективы профилактики гепатита В, кори, краснухи и эпидемического паротита в Москве //РМЖ. 2000. — № 17. — Т. 8.

26. Брусина Е.Б. Эпидемиология госпитальных гнойно-септических инфекций в кардиохирургии / Е.Б. Брусина, Л.С. Барабаш. // Госпитальные инфекции. Л., 1989. — С. 60 — 65.

27. Бухарин О.В. Патогенетические особенности формирования бактерионосительства / О.В. Бухарин, Б.Я. Усвяцов, О.Л. Чернова. // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунолог. 1996. — №2. — С. 98 — 101.

28. Васильева Л.В. Применение электрически активированных растворов, предстерилизационной очистки и стерилизации // Казан, мед. журн. 1993. — Т. 74. — С.466 — 467.

29. Валова H.H. Централизованная стерилизация в лечебном учреждении / H.H. Валова, В. А. Горошина. // Советское здравоохранение. — 1966. — №1. — С. 12 15.

30. Вашков В.И. Средства и методы дезинфекции при инфекционных заболеваниях. М.: Медицина, 1977. — 295 с.

31. Венцела Р.П. Внутрибольничные инфекции. — М.: Медицина, 1990. — 665 с.

32. Владовец В.В., Трухина Г.М., Айзен М.С. и др. Экспериментальное обоснование роли отдельных факторов передачи и механизма распространения синегнойной инфекции //Ж. микробиол. — 1995. -№12. -С. 97-98.

33. Войффен В. Больничная гигиена учреждений здравоохранения и социального обеспечения / В. Войффен, Ф. Обердастер, А. Крамер // Пер. с нем. Минск, Беларусь, 1984. — 464 с.

34. Галкин В.В., Невский К.Д. Проблемные вопросы обращения с отходами ЛПУ //Проблемы обращения с отходами лечебнопрофилактических учреждений: материалы Российской научно-практической конференции. — М., 3-4 июня, 2003. — С. 12 — 14.

35. Танеева Н.Ф. Обоснование комплекса лечебно-профилактических и противоэпидемических мероприятий в урологическом стационаре / Н.Ф. Танеева, А.И. Архангельский. // Госпитальная эпидемиология. Сб. науч. трудов. Л., 1989. — С.83 — 87.

36. Гоик В.Г., Воробейчиков Е.В., Попенко Л.Н. Микрофлора воздуха операционных //Проблемы санитарно-эпидемиологического благополучия населения северо-западного и других районов Российской Федерации. СПб. — 1997. — С. 43 — 44.

37. Горшевкова Э.В. О циркуляции условно-патогенных бактерий в хирургическом стационаре / Э. В. Горшевкова, Д.Н. Кавкало. // Клин, хирургия. 1987. — №1. — С.27 -28.

38. Губарев В.В., Степанов Ф.М. О некоторых аспектах реорганизации дезинфекционной службы и образование государственных дезинфекционных предприятий на примере Курской области //Дезинфекционное дело. — 1995. №3. — С. 18 — 21.

39. Грамашевский Л.В. Общая эпидемиология. — М.: Медицина, 1965. — 288 с.

40. Государственный доклад «О состоянии здоровья населения Российской Федерации в 1995 г.» //Здравоохранение РФ. — 1996. — №1. С. 16-20.

41. Гринина О.В., Паначина М.И. Методы и методики социально-гигиенических исследований. М., 1980. — 85 с.

42. Гундаров И.А., Кисилева Н.В., Копина О.С. Медико-социальные проблемы формирования здорового образа жизни // Медицина и здравоохранение: обзорная информация. — Вып.2. — М.: НПО «Союзмедформ», 1989. 83 с.

43. Далматов В.В. Вопросы методологии и организации эпидемиологического надзора за инфекциями /В.В. Далматов, А.А. Матущенко // Природно-очаговые болезни человека. Республ. Сб. научных работ. — Омск, 1990. — С.З — 16.

44. Далматов В.В. Эпидемиологический надзор за госпитальными инфекциями новорожденных и родильниц / В.В. Далматов, Т.М. Обухова // Эпидемиологический анализ и опыт профилактики внутрибольничной заболеваемости новорожденных и родильниц. — М., 1991.-С.7-13.

45. Денисов В.Н. Некоторые аспекты реформирования системы охраны здоровья населения на территориальном уровне // Бюлл. Сиб. отделения РАМН. 1996. — №3. -С. 15 — 19.

46. Дремова В.П., Путинцева JI.C. Возможность повышения эффективности дезинсекционных мероприятий //Дезинфекционное дело. 1998.- №1.- С. 40-42.

47. Дремова В.П., Путинцева JI.C., Козаков П.Е. Медицинская дезинсекция. Екатеринбург, 1999. — 318 с.

48. Дроздов В.А., Гусев Н.М. Строительная светотехника. М., 1982. — 125 с.

49. Ефимова О.В. Как анализировать финансовое положение предприятия. — М.: БШ «Интел-синтез», 1993.

50. Жданов Г.П. Оценка некоторых методов очистки и стерилизации медицинских инструментов в связи с организацией их централизованной обработки с целью борьбы с сывороточным гепатитом //Дис. канд. Л., 1969.

51. Жданов В.М., Ананьев В.А., Стаханова В.М. Вирусные гепатиты. -М.: Медицина, 1986. 255 с.

52. Заболеваемость взрослого населения в регионах Сибири / Под. общ. ред. В.А. Труфакина, Б.П. Маштакова. — Новосибирск: СО РАМН, 1997.- 103 с.

53. Зайцева Е.Н. Актуальные вопросы реорганизации дезслужбы //Дезинфекционное дело. 1995. — №4. — С. 20 — 21.

54. Зарубин Г.П., Новиков Ю.В. Гигиена города. М., 1986. — С. 254 -256.

55. Захарченко М.П., Маймулов В.Г., Шабров А.В. Диагностика в профилактической медицине. СПб., 1997. — 510 с.

56. Здоровье населения в Сибири /Под общ. ред. акад. РАМН Ю.П. Никитина и акад. МАИ Н.Ф. Герасименко. Новосибирск, 1995. — 128 с.

57. Знаменский А.В. Состояние и перспектива преподавания госпитальной гигиены в военно-медицинской академии / А.В. Знаменский, Л.П. Терентьев, Ю.В. Лизунов. // Проблемы госпитальной гигиены в лечебных учреждениях. — ВМед. А. — СПб. — 1997. С.54 — 57.

58. Золотова Т.Б. Изучение развития резистентности у комнатных мух к трем инсектицидам из различных химических классов /Автореф. дис. к.б.н. -М.: МГУ. 1986. — 24 с.

59. Зуева Л.П. Гнойно-септические госпитальные инфекции: Автореф. дисс. д-ра мед. наук. Л., 1985.

60. Зуева Л.П. Характеристика источников и путей передачи синегнойной инфекции в травматологическом отделении / Л.П. Зуева, Р.Х. Яфаев, Н.И. Владимиров // Журн. микробиологии. — 1986. -№2.-С.59 —63.

61. Зуева Л.П. Загрязненность антисептиков и дезинфекционных средств микроорганизмами в урологической клинике и определение чувствительности к ним / Л.П. Зуева, E.H. Колосовская, Н.Ф. Танеева // Гигиена и санитария. 1989. — №9. — С.81 — 82.

62. Истомина Т.И. Обоснование и разработка проектов центральных стерилизационных отделений больниц / Т.И. Истомина, Л.И. Мындру, А.Г. Макаров // Проблемы дезинфекции и стерилизации. — М., 1970. Вып. 19. С. 59 — 68.

63. Истомина Т.И. К вопросу о необходимости централизованной стерилизации в медицинских учреждениях / Т.И. Истомина, И.П. Душкант, Л.П. Мазурова // Проблемы дезинфекции и стерилизации. М., 1972. — Вып. 22. — С.92 — 95.

64. Исхакова Х.И. Микробиологические аспекты внутрибольничных инфекций в хирургических стационарах / Х.И. Исхакова, В.В. Владовец // Актуальные вопросы внутрибольничных инфекций. — Ташкент: Медицина. 1987. — С. 58-61.

65. Кадыров Ф.Н. Методические основы перехода к новой системе планирования //Экономика здравоохранения. — 1997. № 7/19. — С. 38-44.

66. Кикнадзе C.JL, Меликадзе И.В., Гваселиани Л.Г. Изменение объема работ Тбилисской городской дезинфекционной станции // Матер, международного симпозиума по дезинфекции и стерилизации. М., 1972. — С. 90-91.

67. Климко Н.Н. Кандидемия у больных в отделениях интенсивной терапии / Н.Н. Климко, С.А. Шляпников // Внутрибольничные инфекции проблемы эпидемиологии, клиники, диагностики, лечения и профилактики. -М., 1999. — С. 112—113.

68. Ковалева Е.П., Семина Н.А. Профилактика внутрибольничных инфекций. М.: ТОО «Папоръ», 1993. — 228с.

69. Коваленко Э.Б. Проблемы развития санитарно-эпидемиологической службы //Здравоохранение РФ. — 1992. — С. 1013.

70. Кожарская Г.В. Некоторые аспекты внутрибольничных инфекций // Журн. эпидемиол. и инфекц. б-ни. М., Медицина, 2000. — №5. -С.46-47.

71. Колосовская Е.Н. Чувствительность к дезинфектантам грамотрицательных бактерий, выделенных в стационарах различного профиля // Госпитальная эпидемиология. Л., 1989. — С. 35 — 39.

72. Концепция развития здравоохранения и медицинской науки в Российской федерации //Здравоохранение РФ. 1998. — №3. — С. 7 -13.

73. Колосовская Е.Н. Чувствительность к дезинфектантам грамотрицательных бактерий, выделенных в стационарах различного профиля //Госпитальная эпидемиология: Сб. научных трудов. — Л., 1989.-С. 35-39.

74. Коршунова Г.С. Эпидемиологический анализ вспышки брюшного тифа в областной психиатрической больницы Тверской области // Бюлл. ЗниСО. 1994. — №6. -С. 1 — 2.

75. Костина Г.И. Новые инсектициды для профилактической обработки //РЭТ-инфо. 1999. — №3. — С. 4 — 5.

76. Красильников А.П. Современные проблемы антисептики //Актуальные проблемы химиотерапии бактериальных инфекций: Тезисы докладов Всесоюзной конференции 22-24 октября 1991 г. — М., 1991. С. 331 — 333.

77. Красильников А.П. Антисептики и дезинфектанты как факторы риска развития ятрогенных (внутрибольничных) инфекций / А.П. Красильников, Е.И. Гудкова. // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунол.- 1994.-№2.-С. 119- 126.

78. Кузин С.Н., Костюченок М.И. Раны и раневая инфекция. — М.: Медицина, 1990. 592 с.

79. Кулагина Э.Н., Введенская И.И. Многовариантность критериев оценок экономической эффективности в здравоохранении //Здравоохранение РФ. 1998. — №5. — С. 36 — 39.

80. Куценко Г.И., Кича Д.И., Бондарев В.А. Совершенствование деятельности дезинфекционной службы по обеспечению санэпидблагополучия населения. М.: Хризостом, 2001. — 248 с.

81. Куценко Г.И., Шестопалов Н.В. Организационные технологии и управление деятельностью органов и учреждений в системе Госсанэпиднадзора в субъектах Российской Федерации // Проблемы социальной гигиены и истории медицины. 1997. — №5. — С. 34.

82. Куценко Г.И., Хромченко О.М., Филатов Н.Н. и др. О деятельности учреждений санэпиднадзора в новых экономических условиях (данные социологического исследования) // Проблемы социальной гигиены и истории медицины. 1994. — №4. — С.ЗЗ — 35.

83. Кучерко В.З. Экономика здравоохранения. М., 1996. — 138 с.

84. Леви М.М. Значение контроля стерилизации с помощью бумажных индикаторов и биотестов //Дезинфекционное дело. 1997. — №3. — С. 24-28.

85. Левитин А.И. Проблемы борьбы с переносчиками инфекций в Астраханской области // Матер. VII съезда Всероссийского общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов 28-31 января 1997 г. -М., 1997.-Т. 2.-С. 45.

86. Лившиц М.Л., Брусина Е.Б. Госпитальные инфекции: проблемы и пути решения //ЖМЭИ. 1992. -№1. — С.22 — 24.

87. Лившиц М.Л. О времени забора смывов при бактериологическом контроле качества дезинфекции //Гигиена и санитария. — 1989. — №6. -С. 62-63.

88. Лисицин Ю.П. Социальная гигиена и организация здравоохранения. М.: Медицина, 1992. — 512 с.

89. Лисицин Ю.П. Социальная гигиена (медицина) и организация здравоохранения. Казань, 2000. — 697 с.

90. Лишлок Л. Роль синантропных тараканов в поддержании внутрибольничных инфекций //Дезинфекционное дело. 1994. — №2. -С. 34-37.

91. Любимова А.В. Вспышка внутрибольничного кандидоза в гематологическом отделении / А.В. Любимова, Л.П. Зуева, Г.А. Соколова. // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунол. 1997. — №1. — С.23 -26.

92. Лярский П.П. Основные итоги научных исследований и внедрения в практику здравоохранения в области дезинфекции и стерилизации в XI пятилетке //Вопросы дезинфекции и стерилизации: Сб. научных трудов. М., 1986. — С. 3 — 9.

93. Лярский П.П., Дремова В.П., Брикман Л.И. Медицинская дезинсекция. М., 1984.

94. Лярский П.П., Иойриш А.Н., Мальков О.С. и др. Тактика применения аэрозолей для дезинфекции помещений лечебно-профилактических учреждений //Гигиена и санитария. 1989. — №2. -С.35-38.

95. Малеев В.В. Внутрибольничное распространение холеры. // Внутрибольничные инфекции проблемы эпидемиологии, клиники, диагностики, лечения и профилактики. — М., 1999. — С. 146.

96. Мартова О.В. Эпидемиологический надзор за внутрибольничными инфекциями в лечебно-профилактических учреждениях Астраханской области / О. В. Мартова, P.P. Ахмерова, B.C. Буркин // Журн. эпидемиол. и инфекц. б-ни. М.: Медицина. — 2000. — №5. -С. 43.

97. Медуницин Н.В. Этические проблемы вакцинопрофилактики //Эпидемиология и инфекционные болезни. 1996. — №2. — С. 9 — 12.

98. Мелкова В.К. Методика обследования квартир многоэтажных жилых домов на наличие домовых мышей // Вопросы дезинфекции и стерилизации: Сб. научных трудов. М., 1986. — С. 170 — 175.

99. ИЗ. Монисов А.А. Состояние заболеваемости внутрибольничными инфекциями в Российской Федерации / А.А. Монисов, Г.Ф. Лазикова, Т.Н. Фролочкина. // Журн. эпидемиол. и инфекц. б-ни. -М.: Медицина, 2000. №5. — С. 9 — 12.

100. Назаров Ш.Н. Проблемы вирусного гепатита в отделениях гемодиализа / Ш.Н. Назаров, Р.Н. Акалаев, Ф.А. Арипхаджаева // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунол. 1993. — №2. — С.71 — 74.

101. О санитарно-эпидемиологической ситуации в РФ в 2000 г. // ЗН и СО, 2001. -№1. — С. 2 -5.

102. Одинец А.А. Система защиты населения от членистоногих, имеющих санитарно-эпидемиологическое значение //Дезинфекционное дело. 1997. — №2. — С. 10 — 17.

103. Онищенко Г.Г. Эпидемиологическая обстановка в России в 19911996 гг. по заболеваемости социально обусловленными инфекционными заболеваниями //Микробиология, эпидемиология, иммунология, 1998. -№1,- С. 24-35.

104. Онищенко Г.Г. Эпидемиологическое положение в Российской Федерации /Эпидемиология и инфекционные болезни. 2000. — №4. -С. 4-8.

105. Онищенко Г.Г., Шестопалов Н.В., Иванов С.И, Гульченко Л.П., Подунова Л.Г. Основные этапы развития санитарно-эпидемиологической службы России //Здравоохранение РФ. — 1998. -№3. С. 16-19.

106. Опарин П.С. Актуальные вопросы обращения с медицинскими отходами. Иркутск, 2003. — 116 с.

107. Опарин П.С., Бойко Л.С., Осипова Н.З. Опыт работы Иркутской дезинфекционной станции // Дезинфекционное дело. 1994. — №3. -С. 16-19.

108. Опарин П.С., Панова М.А. Экономические аспекты деятельности дезпредприятий в условиях рыночной экономики // Сибирь-Восток. -Иркутск, 2000.-№12.-С. 16-19.

109. Опарин П. С., Панова М.А. Некоторые аспекты финансового состояния предприятия // Сибирь-Восток. — Иркутск, 2000. — №8. — С. 21 -23.

110. Опарин П.С., Панова М.А. Методы оздоровления финансового состояния предприятия // Сибирь-Восток. — Иркутск, 2000. — №9. — С.36-37.

111. Опарин П.С., Шептунов С.И. Иркутская дезинфекционная станция в условиях экономических реформ // Сибирь-Восток. Иркутск, 1997.3. С. 17-18.

112. Опарин П.С., Егорова Н.Н. Аналитический обзор социально-экономических показателей деятельности дезподразделений региона «Сибирь-Восток» // Сибирь-Восток. Иркутск, 2000. — №11. — С. 22 -26.

113. Опарин П.С. Гигиена больничных отходов. Иркутск, 2001. — 175 с.

114. Панова М.А. Экономические основы деятельности //Сибирь-Восток.- Иркутск, 1999. №5. — С. 48 — 52.

115. Петрухина М.И. Профилактика внутрибольничных инфекций в родовспомогательных учреждениях // Журн. эпидемиол. и инфекц. б-ни. М.: Медицина. — №5, 2000. — С. 27 — 29.

116. Покровский В.И., Щепин О. П., Овчаров В.К., Нечаев B.C. Основные положения концепции развития здравоохранения России и его законодательное обеспечение //Проблемы социальной гигиены и истории медицины. 1995. — №4. — С. 4 — 7.

117. Покровский В.И. Инфекционные болезни в России: оценка ситуации // РМЖ. 2000. — №17. -Т. 8. — С. 3 — 9.

118. Покровский В.И. Внутрибольничные инфекции: проблемы и пути решения / В.И. Покровский, Н.А. Семина. // Журн. эпидемиол. и инфекц. б-ни. М.: Медицина, 2000. — №5. — С. 12 — 14.

119. Потапов А.И. Современные проблемы гигиенической науки и обеспечение санитарно-эпидемиологического благополучия населения // Здравоохранение РФ. 1993. — №1. — С. 3 — 6.

120. Прозоровский С.В. Роль инфекции в смертности детей первого года жизни / С.В. Прозоровский, JI.A. Генчиков. // Эпидемиологическийанализ и опыт профилактики внутрибольничной заболеваемости новорожденных и родильниц. М., 1991. — С. 5 — 7.

121. Прокопенко Ю.И. Основные направления теоретических исследований по проблеме дезинфекции //Современные методы и средства дезинфекции и стерилизации: Сб. научных трудов. М., 1989.-С.7-11.

122. Прохоров Б.Б. Прогноз качества здоровья населения России // Проблемы прогнозирования. 1995. — №5. — С. 119 — 133.

123. Рамкова H.B. Стерилизация изделий медицинского назначения в комплексе мер профилактики внутрибольничных инфекций / H.B. Рамкова, Г.Н. Мельникова, Р.Л. Гутерман. // Антибиотики и химиотерапия. 1993.-Т. 38. -№8-9. -С. 77-80.

124. Региональные проблемы здоровья населения России / Под. общ. ред. В.Л. Белякова. М.: ВИНИТИ. — 1993. — 334 с.

125. Рославцева С.А. Резистентность синантропных насекомых к инсектицидам по материалам XX Международного энтомологического конгресса (Флоренция, Италия) //Дезинфекционное дело. 1997. — №3. -С. 48 — 50.

126. Румянцев Г.И., Куценко Г.И., Шестопалов Н.В. и др. Современное организационно-правовое построение госсанэпидслужбы //Гигиена и санитария. 1998. — №3. — С. 3.

127. Савилов Е.В. с соавт. Применение статистических методов в эпидемиологическом анализе. Новосибирск: ВО «Наука», 1993. -136 с.

128. Семина Н.А., Ковалева Е.П., Генчиков JI.A. Эпидемиология и профилактика внутрибольничных инфекций на современном этапе // Эпидемиология и инфекционные болезни. 1997. — №6. — С. 4 — 8.

129. Семина Н.А. Новое в профилактике госпитальных инфекций // Информ. бюл. М., 1999. — №2. — С. 2 — 6.

130. Семина Н.А., Ковалева Е.П., Галкин В.В. Актуальные вопросы внутрибольничных инфекций // Материалы VIII Всероссийского съезда эпидемиологов, микробиологов и паразитологов, 26-28 марта 2002 г.-М., 2002.

131. Сидоренко Г.И., Можаев Е.А. Санитарное состояние окружающей среды и здоровье населения // АМН СССР. М.: Медицина, 1987. -128 с.

132. Соколова Н.Ф. Роль дезинфекционных мероприятий в системе профилактики инфекционных заболеваний // Матер.республиканской научно-практич. конф., поев. 100-летию Одесской дезстанции. Одесса, 1987. — С. 34 — 36.

133. Соловьев Г.М., Петрова И.В., Ковалев С.В. Иммунокоррекция, профилактика и лечение гнойно-септических осложнений в кардиохирургии АМН СССР М. : Медицина, 1987. — 160 с.

134. Степанова Н.В. Распределение мелких грызунов на озелененных территориях г. Москвы // Растительность и животное население Москвы и Подмосковья: Сборник. 1978. — С. 30 — 32.

135. Тараев Е.М., Назаретян Е.Л., Семендяева М.Е. и др. Эпидемический гепатит. М.: Медицина, 1970. — 446 с.

136. Техова И.Г. и др. Факторы риска возникновения ГСИ у новорожденных /Техова И.Г., Кудряшова Е.А., Камиль М. // Госпит. эпидемиол. Сб. научн. тр. Ленинград, 1989. — С. 44 — 49.

137. Тиллингаст Дж. Стенли. Программа реформирования Российского здравоохранения. // Междунар. журн. медицинской практики. — 1997. -№3. С. 54-62.

138. Трухина Г.М. Грамотрицательная условно-патогенная микрофлора стационаров и ее резистентность к хлорамину / Г.М. Трухина, Н.Ф. Соколова, А.Н. Иойриш // Гигиена и санитария. 1985. — №5. — С. 82 -84.

139. Унтура Г.А. Проблемы организации здравоохранения в условиях повышенных социальных и экологических рисков // Социальное страхование в России. М.: Газпроммедстрах, 1999. —108 с.

140. Фролова А.И. Современные средства борьбы с педикулезом // Матер. VII съезда Всероссийского общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов 28-31 января 1997 г. М., 1997. — Т. 2. — С. 60.

141. Фесенко Г.Ю. Риск возникновения кандидоза у медицинского персонала гематологических стационаров // Внутрибольничные инфекции проблемы эпидемиологии, клиники, диагностики, лечения и профилактики. — М., 1999. — С. 253.

142. Филатов Н.Н. О состоянии инфекционной заболеваемости в лечебно-профилактических учреждениях г. Москвы за 1996 год / Н.Н. Филатов, И.А. Храпунова, Г.А. Гвелеенани // Новое в профилактике госпитальной инфекции. — М., 1997. №1. — С. 9 — 25.

143. Филиппенко Л.И. Использование дезоксона для дезинфекции в хирургическом отделении. / Л.И. Филиппенко, А.Я. Яремчук, А.А. Войтенко // Клиническая хирургия. 1990. — №1. — С.69 — 70.

144. Фирсова С.П. Экономические аспекты деятельности государственной санитарно-эпидемиологической службы / учебно-методическое пособие. Иркутск, 1999. 107 с.

145. Хизгяев В.И. Организация Госсанэпиднадзора за дезинфекционной деятельностью в современных условиях на примере г. Москвы // Дезинфекционное дело. 2000. — № 1. — С. 8 — 11.

146. Хрусталева Н.А. Эпидемиологическое, санитарно-гигиеническое и медицинское значение синантропных тараканов // В кн.: Бюллетень Московского общества испытателей. Отд. биол. М., 1994. — С. 3 — 14.

147. Цитко А.А. Эпидемиологическое моделирование в системе надзора за ВИЧ инфекцией / А.А. Цитко, Е.Б. Брусина // Эпидемиол.надзор. Теория, методы и организация. СПб. — М — Кемерово — Барнаул, 1977.-С. 182- 188.

148. Чистенко Г.Н. Внутрибольничные инфекции в Беларуси / Г.Н. Чистенко, В.В. Шило, В.Н. Горбачева // Неблагоприятные эффекты современных методов лечения. Минск, 1993. — С. 43 — 48.

149. Чубирко М.И. Разработка рациональных систем управления санитарно-эпидемиологической службой в новых экономических условиях // Автореф. к.м.н. М., 1994. — 57 с.

150. Шандала М. Г., Звигаяцковский Я.И. окружающая среда и здоровье населения. Киев, 1988. — 152 с.

151. Шандала М.Г. Задачи дезинфектологии как науки на современном этапе // Дезинфекционное дело.- 1996. №3. — С. 31 — 35.

152. Шандала М.Г. Актуальные проблемы дезинфектологии и пути их решения // Матер. VII съезда Всероссийского общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов 28-31 января 1997 г. -М., 1997.-Т. 2.-С. 62-63.

153. Шаханина И.Л. О проведении социально-экономического анализа инфекционных болезней: Методические рекомендации. — М., 1987. -25 с.

154. Шаханина И.Л., Осипова Л.А., Виноград Д.Л. Разработка автоматизированной системы расчета «стандартных» значенийэкономического ущерба, нанесенного одним случаем инфекционной болезни // Ж. микробиолога. 1993. — №1. — С. 33 — 39.

155. Шаханина И.Л. Экономический анализ инфекционных болезней: Методические рекомендации. М., 1997. — 21 с.

156. Шевченко Ю.Л. Роль современных факторов во взаимодействии человека и микроорганизмов. Значение национального здравоохранения в профилактике и лечении инфекционных болезней // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. М.: «С-ИНФО», — №6, 2000.-С. 3-6.

157. Шестопалов Н.В. Реформирование подразделений дезинфекционного профиля // Матер. VII съезда Всероссийского общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов. — М., 1996.-Т. 2.-С. 68-69.

158. Шмитт В.И. Общая хирургия / В.И. Шмитт, В. Харинг, М.И. Кузин // Совместное издание СССР ГДР в 2-х томах. — М., 1985. — Т. 2. — С. 41-50.

159. Шрамова Е.И. Заболеваемость внутрибольничными инфекциями в Чехословакии, выявленная по методике ВОЗ / Е.И. Шрамова, А. Бартньово, С Болек // Госпитальные инфекции и лекарственная устойчивость микроорганизмов. Сб. науч. тр. — М., 1992. С. 11.

160. Щербо А.П. Больничная гигиена. СПб., 2000. — 484 с.

161. Ющук Н.Д. Эпидемиология / М.А. Жосова., В.Н. Бушева // М.: Медицина. 1993. — С. 280 — 296.

162. Яфаев Р.Х., Зуева Л.П. Эпидемиология внутрибольничной инфекции. Л.: Медицина, — 1989. — 168 с.

163. Allan S.R. Nosocomial nursery infections // Hospital infections. / Ed. Bennett I.Y., Boston / Toronto, 1986. P. 299 — 313.

164. Altemari S.M., Breiki H., Abdul-Knader A.S. et. al. Wound infection following beiry surgeri. A prospective surgeri // Inf. Surg. 1991. — Apr-Jun. — 76 (2).-P. 77-80.

165. Altman C.L. Infection control: 2000 Review and update for electroneurodiagnostic technologists. // American Journal of Electroneurodiagnostic Technology, 2000. № 40/2. — P. 73 — 97.

166. Bengtson S., Krutson K. The infected knee arthroplasty A6 year follow-up of 357 cases // Acta Orthop Scand. — 1991. — Aug. — № 62 (4). -P.301-311.

167. Blackwood B. J. Infect. Desiase. 1998. — № 39(4). — P. 315 — 321.

168. Brahman P.S. Nosocomial infection control: Ari overview // Rev. infect. Dis. -1981.-3, №4. p. 640-648.

169. Bronkal J. Centralni sterilizace // Cs. Zdrav. 1962. — № 7-8. — P. 350 -360.

170. Desai N., Philpott-Howard J. , Wade J., Casewell M. Infection control training: evaluation of a computer-assisted learning package // J. of hospital infection. 2000 (Mar). — № 44 (3). — P. 193 — 199.

171. Dave J; Wilcox M H; Kellett M. Glove powder: implications for infection control // Jornal of hospital infection, (1999 Aug). №42 (4). — P. 283 -285.

172. Dermel J. Nase Zkagennosti a provozem centralni sterilizace // Hospital. -1963. -59. -№1. — P. 14-24.

173. Dy M E; Dy M.T. Nord J A; LaBombardi V J; Kislak J W Acinetobacter Infections: epidemiology, pathogenicity, drug effects // Infection control and hospital epidemiology. 1999 (Aug). — № 20 (8). — P. 56 — 57.

174. Calabro K., Weltge A., Pamell S. // Am. J. Infect. Control. 1998. — Aug. -№26 (4).-P. 431 -436.

175. Cardo D M; Soule В M. Hospital infection prevention and control: A global perspective editorial. // American J. of infection control. — 1999 (Jun). №27 (3). — P. 233 — 235.

176. Ghanem H M; Fahmy I; Fallon B. Infection control in outpatient unicomponent penile prosthesis surgery // International journal of impotence research, (1999 Feb). -№11 (1). P. 25 — 27.

177. Gould D., Wilson-Barnett J. Инфекции управляющая практика // British journal of nursing, 1999. — № 33(2). — C. 143 — 160.

178. Greco D., Moro M.L. Surveillance activity in Italy // Inflectional symposium on the control of hospital infections. Proceedings. — rome. Italy, April 27-29, 1987. P. 14-16.

179. Grossi E.A., Esposito R., Harris L.J. Sternal wound infections and use of internal mammary artery graphic // J. Thorac. Cardiovasc. Surg. — 1991. (Sep). №102 (3). — P. 342 — 346.

180. Hacek D M; Suriano T; Noskin G A. Medical and economic benefit of a comprehensive infection controlprogram that includes routine determination of microbial clonality // American journal of clinical. — 1999 (May). № 111 (5). — P. 647 — 654.

181. Harpaz R., Von Seidlein, Averhoff F.M. Transmission of hepatitis В virus to multiple patients from a surgeon without of inadequate infection control //N. Engl. J. Med. 1996. -№ 334. — P. 549 — 554.

182. Herwaldt L.A., Smitt S. D. // Infection control and hospital epidemiology. 1998 (Jan). — № 19 (1). — P. 41 — 74.

183. Hope K.M., Henderson E., Ledgerwood D. 11 Am. J. Infect. Control., — 1996.-№24 (2).-P. 57-66.

184. Z. De Jonq, Arsicault C., Massip P. Infection nosocomiales daris un service of urologiues // Pathol. Biol. (Paris). 1991 (May). — № 39(5). -P. 561 -564.

185. Ivert Т., Lindblom D., Eidh J.E. Management of deep stermal wound infection after cardiac surgery Hangman Syndrome // Scand. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 1991. — № 25 (2). — P. 11 — 117.

186. Jensen L.P., Lorentzen J.E., Schroeder T.V. Ragistreing at postoperative sarcam phikationer pa en karkirurgisk afideting. // Ugeskr-Laeger. — 1991 (Mar). № 153(10). — P. 717 — 719.

187. Kalnowski G., Wiegand H., Ruden H. The microbiol contamination of hospital waste // Zbi. Baki Hyg. I. Abt. Orig. B. 1983. — № 178. — P. 364-379.

188. Kaul A.F., Jewett J.F. Agents and techniques for disinfection of the skin // Surf. Gynecol. Obstet. 1981. -№ 152. — P. 677 — 685.

189. Kingsley A; Hutter S; Green N; Speirs G. Waterbirths: regional audit of infection control practices // Journal of hospital infection. 1999 (Feb). — №41 (2).-P. 155- 157.

190. Kende E; Borocz K. Nosocomial surveillance — compass for infection control // Orvosi hetilap. 2000 (Mar 26). -№ 141 (13). — P. 651 — 656.

191. Knoll K.N. Problematic dez Abfallent sorgng im Krankenhaus // Z. Ges. Hyg. — 1990. — № 2. — S. 104 — 105.

192. Krasner D The AHCPR pressure ulcer infection control recommendations revisited // Ostomy/wound management. 1999 (Jan). — № 45 (1A Suppl). — S. 88-91.

193. Kraupner K.W. Der Neuentwurf DIN 1946, Tail 4 «Raumiufttechnische Anlagen in Krankenhausern» // Forum Stadtehyg, 1988. V. 39. — № 6. — S. 235-239.

194. Kunaratanapruk S., Silpapojakul K. Unnecessary hospital infection control practices in Thailand: a survey // Journal of hospital infection. -1998 (Sep). № 40 (1). — P. 55 — 59.

195. Losonczy D. Iatrogen infection. Budapest, 1978. — 452 p.

196. Luich R. Letter to the editor Infection control. // American Journal of Electroneurodiagnostic Technology. 2000. — № 40/2. — P. 71 — 72.

197. Mallison G.F. Decombination, disinfection and sterilization. // Nurs. Clin. North. Am.-1980.-№ 15.-P. 757-767.

198. Mallison G.F. Decombination, disinfection and sterilization. // Nurs. Clin. North. Am. 1980. — № 15. — P. 757 — 767.

199. McConnell E.A. Infection control: more than a matter of economics. // Journal Article, Nursing Management. 1999 (Jun). — № 30 (6). — P. 64 -65.

200. Mc. Gowan J.E. Jr. // Netherlands journal of medicine. 1998 (Jun). — №52 (6).-P. 233-237.

201. Miyazaki H., Nagata N., Shigematsu N. A comparison of community -acgured lung infection review of autopsy cases in Hisayama town // Nippon — Kyobi — Shikkai — Zasshi. — 1992 (Nov). — № 30(11). — P. 1911 -1916.

202. Minooee A., Rickman L.S. Expanding the role of the infection control professional in the cost-effective use of antibiotics // American journal of infection control. 2000 (Feb). — № 28 (1). — P. 57 — 65.

203. Mirza A., Wyatt M., Begue R.E. Infection control practices and the pregnant health care worker // Pediatric infectious disease journal. — 1999 (Jan). № 18(1).-P. 18-22.

204. Morton N. Use of antimicrobial agents and drug resistance / N. Morton, M.D. Swartz // The New Engl. J. of Med. 1999. — 337(7). — P. 491 -492.

205. Orrett F.A., Brooks P.J., Richardson E.G. // Infection control and hospital epidemiology. 1998 (Feb). — P. 96 — 99.

206. Orita H., Shimanuki Т., Fukasawa M. A clinical study of postoperative infections following open hart surgery: occurrence and microbiological findings in 782 cases // Surg. Today. — 1992. — № 22 (3). — P. 207 — 212.

207. Patir R, Mahapatra A.K., Baneri A.K. Risk factorrs in postoperative neurosurgical infection. A prospective study // Acta Neurochir. (Wien). -1992. № 119 (1-4). — P. 80 — 84.

208. Pereira M.S., Moriya T.M., Gir E. // Revista latino-americana de enfermagem. 1996 (Jan). -№ 4 (1). — P. 145 — 162.

209. Pittet D., Mourouga P., Perneger T.V.Compliance with handwashing in a teaching hospital infection Control Program see comments. // Annals of internal medicine. 1999 (Jan 19). — № 130 (2). — P. 126 — 130.

210. Piatt J., Bucknall R.A. An experimental evaluation of antiseptic wound ivigation // Journal Hosp. Infect. 1984. — № 5. — P. 181 — 188.

211. Posenberg A., Alatary S.D., Peterson A.F. Safety and efficacy of the antiseptic chlorhexidine gluconate // Surg. Gynecol. Obstet. 1976. — № 143.-P. 780-792.

212. Putala W.A., Stiegel M.M., Sarubgi F.A. Decontamination of laboratory microbiological waste by steam sterilization // Ahhk. Envision Microbiol. 1982.-№42.-P. 1311 — 1316.

213. Putala W.A. Prevention and Control of Nosocomial infections. // Boltimore. 1990. — P. 159 — 211.

214. Putter V.L. Hygienic Hand disinfection /Яnfet. Control. 1984. — № 5. -P. 18-22.

215. Richer S., Lang R., Zur F. Infected urine as a risk factor postprostatectomy wound infection (see comments) // Nissenkom infec. Control. Hospit. Epidemiology. 1999 (Mar). — № 12 (3). — P. 147 — 149.

216. Rhinehart E. Watching the bottom line: enhancing the role and impact of infection control in a managed care environment // American Journal of infection control. 2000 (Feb). — № 28 (1). — P. 25 — 29.

217. Roberts L., Smith W., Jorm L. Effect of infection control measures on the frequency of upper respiratory infection in child care: a randomized, controlled trial.// Pediatrics.-2000 (Apr). -№105 (4). P. 738 — 742.

218. Roqy M., Fugger R., Riedi E. Atiologie und Konsequenz der postoperativen Wundifektion // Langenbecks Arch. Chir. — 1991. — № 376 (3).-P. 172- 175.

219. Rutala W.A., Weber DJ. Infection control: the role of disinfection and sterilization //Journal of hospital infection. 1999 (Dec). -№ 43 (Suppl). -S. 43-55.

220. Rutter M.L. Hygienic hand disinfection // Infect. Control. 1984. — W.S. -P. 18-22.

221. Sanborn M.R., Wan S.K., Balard R. Microwave sterilization of plastic tissue culture vessels for reuse // Appl. Environ. Microbiol. — 1982. — № 44.-P. 9660-9664.

222. Seeberg S., Brinkhoff B. Epidemiology and control of staphylococcus pyoderma among newborn infants // Journal Hospit. Infect. — 1984. — №5. -P. 121-136.

223. Shuaber H., Shurtalber H., Chugh T. Wound infection in carofiac surgery. // Journal Corofiovasc. Surg. 1987. — № 28. — P. 139 — 142.

224. Steelman V.M. Prion diseases—an evidence-based protocol for infection control //Aorn journal. 1999 (May). — № 69 (5). — P. 946 — 954, 956 -967, 968-976.

225. Welch J.D. The organisation of central sterile suppli departments // Journal Clin. Puth. 1961. -V. 14. -№ 1. — P. 69 — 75.

226. White M.C. Mortaity associated with nosocomial infections: natysis of mothipli cause of death data // Journal Cin. Epidemiol. 1993. — № 461..-P. 95- 100.

227. White R.R. //Journal здравоохранение лекарства. 1995 (Jun). — №172..-P. 146- 149.

228. Whitehouse J.D., Sexton D.J., Kirkland K.B. //Comprehensive therapy. -1998 (Feb).-P. 54-58.

Тесты по разделу «Инфекционная безопасность. Инфекционный контроль»

Тренировочные тесты по разделу

«Инфекционная безопасность. Инфекционный контроль»


  1. Целью дезинфекции является уничтожение

а) всех микроорганизмов

б) вегетативных и споровых форм патогенных и условно — патогенных микроорганизмов

в) вегетативных микроорганизмов

г) споровых форм микроорганизмов


  1. Основную долю возбудителей ВБИ составляют

а) патогенные бактерии

б) условно-патогенные бактерии

в) вирусы

г) грибы


  1. Для генеральной и текущей уборок предпочтительно использовать препараты, обладающие свойствами

а) только дезинфицирующими

б) дезинфицирующими и моющими

в) только моющими

г) моющими и дезодорирующими


  1. Все отходы ЛПУ по степени опасности делят на

а) 2 класса

б) 3 класса

в) 4 класса

г) 5 классов


  1. Контроль стерильности изделий медицинского назначения проводится методом

а) химическим

б) биологическим (посев на питательные среды)

в) механическим

г) физическим


  1. Гигиеническая обработка пациентов стационара ЛПУ должна проводиться не реже 1 раза в

а) 1 день

б) 3 дня

в) 5 дней

г) 7 дней


  1. Для контроля качества дезинфекции

а) делают смывы с различных поверхностей с последующим посевом на питательные среды

б) ставят азопирамовую пробу

в) ставят фенолфталеиновую пробу

г) используют химические индикаторы


  1. Физический контроль режима стерилизации предусматривает:

а) использование индикаторов

б) контроль работы приборов стерилизатора

в) использование биотестов

г) контроль влажности обработанных изделий


  1. Мероприятия по профилактике ВБИ, направленные на обезвреживание источника инфекции

а) вакцинация

б) дезинфекция

в) выявление и изоляция инфекционных больных и носителей

г) сбор и утилизация медицинских отходов


  1. Свойство дезинфицирующего средства, обеспечивающее уничтожение грибов

а) бактерицидное

б) вирулицидное

в) фунгицидное

г) бактериостатическое


  1. Изделия медицинского назначения, не содержащие жизнеспособных микроорганизмов, но содержащие споры, считаются

а) чистыми

б) продезинфицированными

в) стерильными

г) одноразовыми


  1. Целью предстерилизационной очистки медицинского инструментария является

а) удаление различных загрязнений и остатков лекарственных средств

б) уничтожение только патогенных микробов

в) уничтожение патогенных и условно-патогенных микробов

г) уничтожение всех микробов и их спор


  1. К методам дезинфекции относят

а) генеральную и текущую уборки

б) физическую и химическую

в) профилактическую и очаговую

г) текущую и заключительную


  1. Приобретение устойчивости к дезинфектантам характерно для возбудителей

а) госпитальных

б) патогенных

в) условно-патогенных

г) вирусов


  1. После проведения инвазивных процедур  медицинские изделия необходимо продезинфицировать по режимам для инфекций

а) бактериальных

б) вирусных

в) грибковых

г) вызванных простейшими


  1. Медицинские отходы, загрязненные биологическими жидкостями пациентов, в том числе кровью, относятся к классу

а) А

б) Б

в) В

г) Г


  1. На стерильном столе, накрытом простынями, срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных без упаковки

а) должны быть использованы непосредственно после стерилизации 4-6 часов

б) 24 часа

в) 3 суток

г) 20 суток


  1. Оценка качества стерилизации  путем наблюдения за приборами стерилизаторов — это контроль

а) химический

б) физический

в) биологический

г) механический


  1. Повторный осмотр пациентов с педикулезом после обработки проводится через

а) 5 дней

б) 7 дней

в) 15-20 дней

г) 25 дней


  1. Генеральная уборка в отделениях высокого риска проводится дезинфицирующими средствами в концентрациях для инфекций

а) бактериальных

б) вирусных

в) грибковых

г) вызванных простейшими


  1. Контроль стерильности изделий медицинского назначения проводят

а) посевом смывов с изделий на питательные среды

б) использованием биотестов с культурами споровых микробов

в) химическими индикаторами

г) физическим методом


  1. Изделия медицинского назначения, не содержащие жизнеспособных микроорганизмов и спор, считаются

а) чистыми

б) продезинфицированными

в) стерильными

г) одноразовыми


  1. Свойство дезинфицирующего средства, обеспечивающее уничтожение вирусов

а) бактерицидное

б) вирулицидное

в) фунгицидное

г) бактериостатическое


  1. Целью стерилизации является уничтожение на изделиях медицинского назначения

а) всех микробов и их спор

б) только патогенных микробов

в) только условно-патогенных микробов

г) и патогенных, и условно-патогенных микробов


  1. Основная доля возбудителей внутрибольничных инфекций приходится на

а) патогенные бактерии

б) условно-патогенные микробы

в) вирусы

г) непатогенные микробы


  1. Дезинфектанты, обладающие моющими свойствами и низкой токсичностью, чаще относятся к группе

а) альдегидсодержащих

б) ЧАС

в) кислородсодержащих

г) хлорсодержащих


  1. Одноразовые пакеты для сбора отходов ЛПУ, относящихся классу Б, должны иметь окраску

а) черную

б) красную

в) белую

г) желтую


  1. Оптимальная рабочая температура большинства растворов при дезинфекции

а) 10 – 18о С

б) 18 – 26о С

в) 30 – 36о С

г) выше 40о С


  1. Срок сохранения стерильности одноразовых инструментов в двойных промышленных полиэтиленовых пакетах составляет

а) 3 суток

б) 20 суток

в) 6-12 мес.

г) 1- 5 лет


  1. Оценка качества стерилизации путем применения индикаторов – это контроль

а) химический

б) механический

в) биологический

г) физический


  1. Для обработки волосистой части головы при обнаружении педикулеза можно использовать раствор

а) фурациллина

б) мыльный

в) гидрокарбоната натрия

г) медифокса


  1. Медицинские изделия после предстерилизационной очистки разрешено сушить

а) протиранием ветошью

б) на открытом воздухе в лотке

в) сухим горячим воздухом при 85о С

г) в термостате


  1. Мероприятия по профилактике ВБИ, направленные на повышение невосприимчивости пациентов и персонала

а) вакцинация

б) дезинфекция

в) выявление и изоляция инфекционных больных и носителей

г) использование спецодежды, масок, перчаток


  1. Инфекционная безопасность – это

а) использование средств индивидуальной защиты при выполнении манипуляций

б) соблюдение правил асептики и антисептики

в) отсутствие патогенных микробов на различных поверхностях

г) отсутствие патогенных и условно-патогенных микробов на эпидемиологически значимых объектах больничной среды


  1. Свойство дезинфицирующего средства, обеспечивающее уничтожение бактерий

а) бактерицидное

б) вирулицидное

в) фунгицидное

г) бактериостатическое


  1. Для стерилизации резиновых и некоторых полимерных изделий в ЦСО используют стерилизатор

а) водяной

б) паровой

в) воздушный

г) гласперленовый


  1. При дезинфекции погибают

а) только вегетативные формы микробов

б) только споровые формы микробов

в) вегетативные и споровые формы микробов

г) только вирусы


  1. При механическом методе дезинфекции используют

а) УФО, ультразвук

б) мытье, проветривание

в) орошение дезсредствами

г) пар под давлением


  1. ВБИ могут быть вызваны

а) любыми микроорганизмами

б) только вирусами

в) только бактериями

г) только патогенными возбудителями


  1. Дезинфектанты, обладающие способностью фиксировать биологические загрязнения, чаще относятся к группе

а) альдегидсодержащих

б) кислородсодержащих

в) ЧАС

г) фенолсодержащих


  1. Одноразовые пакеты для сбора отходов ЛПУ, относящихся к классу А, должны иметь окраску

а) черную

б) красную

в) белую

г) желтую


  1. Комбинированная дезинфекция – это сочетание методов

а) физический + механический

б) физический + химический

в) механический + химический

г) механический+физический+химический


  1. Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в двойной бязевой упаковке, составляет

а) 1 сутки

б) 3 суток

в) 20 суток

г) 6 –12 мес.


  1. Оценка качества стерилизации путем обнаружения микроорганизмов на объектах – это контроль

а) химический

б) механический

в) биологический

г) физический


  1. При попадании крови на кожные покровы, их необходимо обработать

а) раствором перманганата калия

б) 5% спиртовым раствором йода

в) 70% спиртом

г) 96% спиртом


  1. При проведении генеральных уборок смыв дезинфектанта с поверхностей проводится

а) стерильной ветошью водопроводной водой

б) чистой ветошью водопроводной водой

в) чистой ветошью дистиллированной водой

г) чистой ветошью кипячённой водой


  1. Текущая уборка в стационарах проводится (в соответствии с Сан.П и Н   2.1.3.1375-03)

а) 1 раз в сутки

б) 2 раза в сутки

в) 1 раз в 7 дней

г) 2 раза в 7 дней


  1. Химические индикаторы используют для контроля

а) режимов дезинфекции

б) режимов стерилизации

в) предстерилизационной очистки

г) стерильности изделия


  1. Основной путь передачи  ВИЧ-инфекции в ЛПУ

а) воздушно-капельный

б) контактно-бытовой

в) парентеральный

г) пищевой


  1. При проведении дезинфекционных мероприятий погибают

а) только бактерии

б) только вирусы

в) вегетативные формы микроорганизмов

г) вегетативные и споровые формы микроорганизмов


  1. Физический метод дезинфекции – это

а) стирка, мытье, проветривание

б) протирание дезсредствами

в) воздействие высокой температурой, паром, излучением

г) использование антибиотиков


  1. Наибольшей устойчивостью во внешней среде обладают

а) вирусы

б) грибы

в) споры

г) бактерии


  1. К дезинфектантам, обладающим коррозионной активностью, относятся группы

а) хлорсодержащих

б) ЧАС

в) альдегидсодержащих

г) гуанидинов


  1. Отходы, не имеющие контакта с биологическими жидкостями пациентов, инфекционными больными, не токсичные отходы относятся к классу

а) А

б) Б

в) В

г) Г


  1. Одноразовые изделия медицинского назначения перед утилизацией подвергают

а) ополаскиванию проточной водой

б) мойке

в) дезинфекции

г) стерилизации


  1. Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в стерилизационной коробке без фильтра, составляет

а) 1 сутки

б) 3 суток

в) 20 суток

г) 6 –12 мес.


  1. Эффективность дезинфекционных мероприятий проверяют

а) химическими индикаторами

б) азопирамовой пробой

в) путем смывов с различных поверхностей и посевом на питательные среды

г) пробой с суданом III


  1. При попадании биологических материалов на слизистую оболочку носа, ее необходимо обработать раствором перманганата калия

а) 0,05%

б) 0,5%

в) 0,01%

г) 0,1%


  1. Стерилизация текстиля можно проводить методом

а) паровым

б) плазменным

в) воздушным

г) инфракрасным


  1. Самым надежным методом контроля качества стерилизации является

а) биологический

б) химический

в) физический

г) механический


  1. При стерилизации погибают

а) все микроорганизмы (в том числе споровые формы)

б) вегетативные формы микроорганизмов

в) только патогенные микроорганизмы

г) вегетативные формы микроорганизмом и некоторые споры


  1. К химическому методу дезинфекции относится

а) обработка дезинфектантами

б) использование УФО

в) использование бактериальных фильтров

г) использование пара под давлением


  1. Основную долю возбудителей ВБИ составляют

а) бактерии и вирусы

б) простейшие

в) грибы

г) прионы


  1. Радиоактивные отходы ЛПУ относятся к классу

а) А

б) Б

в) В

г) Д


  1. Инструменты после инвазивных манипуляций в целях дезинфекции

а) протирают дезраствором двукратно с промежутком в 15 минут

б) погружают в дезраствор на время экспозиции

в) ополаскиваются в растворе дезсредства

г) орошаются дезсредством


  1. Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в стерилизационных коробках с фильтрами, составляет

а) 1 сутки

Дезинфекция, предстерилизационная очистка, стерилизация изделий медицинского назначения

Дезинфекция и стерилизация изделий медицинского назначения проводится для обезвреживания либо уничтожения различных микроорганизмов. Но некоторые руководители лечебных учреждений, стремясь сэкономить, относятся к этим мероприятиям недостаточно ответственно. В результате значительно возрастает риск развития различных инфекционных заболеваний, в том числе и гнойно-септических, как среди больных, так и сотрудников ЛПУ. Поэтому очень важно правильно обеззараживать медицинские изделия.  Качество дезинфекции можно оценить с помощью смывов на определение золотистого стафилококка, синегнойной палочки и бактерий группы кишечной палочки. Контролируют 1 % одновременно обработанных изделий, но не менее трех инструментов. Дезинфекция считается эффективной при отсутствии роста микроорганизмов.

Обработка медицинских инструментов включает в себя дезинфекцию, предстерилизационную очистку и собственно стерилизацию. Общие правила организации указанных процессов установлены «Методическими указаниями по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения» (МУ-287-113). Их утвердил Департамент Госсанэпиднадзора Минздрава РФ 30.12.1998 г. Кроме того, применяются утвержденные НИИ дезинфектологии Роспотребнадзора методические пособия по применению конкретных дезинфицирующих средств.

Познакомимся сначала с дезинфекцией, которая является достаточно сложной, объемной и универсальной для различных ЛПУ.

Что такое дезинфекция

Этот термин обозначает уничтожение патогенных и условно-патогенных микроорганизмов на всех поверхностях в помещениях, в том числе на полу, стенах, ручках дверей, выключателях, подоконниках, а также на жесткой мебели, поверхностях врачебного оборудования, в воздухе помещений, на посуде, белье, изделиях медицинского назначения и предметах ухода за больными, санитарно-техническом оборудовании, биологических жидкостях. Словом, дезинфекцию должны проходить все инструменты и расходные материалы, которые используются в работе любого ЛПУ.

Задачей дезинфекции является предупреждение или ликвидация накопления, размножения и распространения  возбудителей заболеваний. И в первую очередь, если мы говорим о больницах,  внутрибольничных инфекций. Дезинфекция может быть профилактической и очаговой.

Профилактическая дезинфекция проводится для защиты людей от возможного заражения. В лечебных учреждениях она выполняется в виде текущей ежедневной влажной уборки и генеральной уборки эпидзначимых кабинетов (операционных, перевязочных) один раз в неделю. Очаговая дезинфекция проводится в случае возникновения или подозрения на возникновение инфекционного заболевания.

Препарат для проведения дезинфекции и его концентрация выбираются исходя из конкретного инфекционного заболевания. В зависимости от вида медицинского изделия проводят дезинфекцию высокого (ДВУ), промежуточного (ДПУ) и низкого уровней (ДНУ).

А теперь условно разделим обрабатываемые предметы на несколько видов. «Некритические» контактируют с неповрежденной кожей. «Полукритические» контактируют со слизистыми оболочками или поврежденной кожей. «Критические» проникают в стерильные ткани организма или сосуды, контактируют с кровью или инъекционными растворами.

ДВУ используется для обработки «критических» предметов. При этом методе обработки погибают все микроорганизмы, кроме спор бактерий. Для ДВУ применяют глутаровый альдегид, диоксид хлора, 6 % раствор перекиси водорода и средства на основе надуксусной кислоты. Эти химические средства можно использовать и для стерилизации. Однако при стерилизации данными веществами время обработки значительно увеличивается.

ДПУ используется для обработки «полукритических предметов. При проведении ДПУ погибают вегетативные формы бактерий, в том числе микобактерии, большинство вирусов и грибов. Однако споры бактерий в этих условиях выживают. Мелкие нелипидные вирусы, например энтеровирусы, риновирусы, более устойчивы к бактерицидным средствам. Крупные же липидные вирусы, такие как аденовирусы, вирус гепатита В и ВИЧ, обычно погибают при обработке дезинфектантами промежуточного уровня. К дезинфекционным средствам, используемым для ДПУ, относятся практически все препараты, концентрация которых готовится по режиму уничтожения бактерий и в соответствии с методическими указаниями к каждому используемому препарату.

ДНУ используется для обработки «некритических» и некоторых «полукритических» предметов. Например, для обработки ванн, которые применяют при гидротерапии пациентов с поврежденной кожей. После ДНУ погибают вегетативные формы большинства видов бактерий, вирусы и грибы. Не реагируют на этот метод обработки споры бактерий, микобактерии и мелкие нелипидные вирусы. К средствам ДНУ относятся соединения на основе 70 % и 90 % этилового или изопропилового спирта, хлорсодержащие препараты, некоторые фенолсодержащие средства и йодофоры. Среди дезинфектантов низкого уровня также можно назвать препараты на основе четвертичных аммониевых соединений.

Применяются 4 основных метода дезинфекции:

Механический метод – это проветривание, вентиляция помещений, стирка белья, обработка поверхностей пылесосом, протирание их влажной ветошью.

Физический метод заключается в высокотемпературной обработке Используются кипячение в дистиллированной воде или воде с добавлением натрия двууглекислого (питьевая сода), паровой метод в стерилизаторе (автоклаве), воздушный метод в суховоздушном шкафу. Этот метод надежен, экологически чист и безопасен для персонала.

Химический метод позволяет обрабатывать медицинские предметы различными химическими веществами в жидком, газообразном состоянии. Изделия погружают в дезраствор, налитый в пластмассовые, стеклянные или покрытые эмалью без повреждений емкости. Для проведения такой дезинфекции рекомендуется применять специальные контейнеры, в которых изделия размещаются на перфорированных решетках. Это снижает риск инфицирования и травматизации персонала. Емкости с растворами дезинфицирующих средств должны быть снабжены крышками, иметь надписи с указанием названия средства, его концентрации, срока приготовления и использования.

Биологический метод основан на использовании антагонизма различных видов микроорганизмов. Так, при использовании бактериофагов, то есть вирусов бактерий, уничтожаются стафилококки, синегнойная палочка, брюшнотифозные бактерии и т. д.

К сведению. Бактериофаги узко специфичны. Например, стафилококковый бактериофаг, проникая в микробную клетку стафилококка, уничтожает только ее. Для обработки медицинских изделий их не применяют, но зато их можно достаточно эффективно использовать для лечения людей и для обеззараживания поверхностей, особенно там, где сформировался госпитальный штамм (например, роддома). Также бактериофаги хорошо знакомы работникам предприятий коммунальной сферы. Их используют для обеззараживания сточных вод на полях фильтрации.

Средства химической дезинфекции

Средства химической дезинфекции наиболее часто используется в ЛПУ. Большинство таких средств по химическому составу можно разделить на 7 групп.

В состав галогенсодержащих веществ входят в качестве активного действующего вещества хлор, бром, йод. Препаратами из этой группы являются, в частности, Хлорамин Б, Хлорэффект, гипохлорид натрия, Де-хлор, нейтральный анолит, Сульфохлорантин, Пресепт, хлоргексидин глюконат и т.д. 

В кислородсодержащей группе препаратов действующим веществом является кислород, выделяющийся из перекиси водорода, перекисных соединений, надкислот. Препаратами этой группы являются, например, перекись водорода, Оксидезин, Пероксимед, Окадез, Клиндезин  Окси, Виркон.

Средства на основе катионных поверхностно-активных веществ (ПАВы) представляются весьма перспективными, так как позволют совмещать дезинфекцию и предстерилизационную обработку. ПАВы не вызывают коррозию медицинских инструментов. К препаратам из этой группы относятся АХД 2000 специаль, Аламинол и Аламинол плюс, Бриллиант, Велтолен, Ника-дез, Премьер, Самаровка, Септодор форте, Вегосепт.

Гуанидсодержащие средства созданы на основе сложных органических соединений. Они активны в отношении широкого спектра микроорганизмов. Препаратами этой группы являются Лизоформин специаль, Лизетол АФ (при его использовании металлические инструменты полностью очищаются, причем без коррозии), Пливасепт 5%, хлоргексидин биглюконат (Гибитан), Фогуцид, который на обработанной поверхности образует защитную пленку, действующую от 3 до 7 суток.

В состав альдегидсодержащих средств входят глутаровый или янтарный альдегид. Препараты этой группы обладают выраженным бактерицидным, вирулоцидным, фунгицидным, спороцидным действием. Вместе с тем они отрицательно действуют на макроорганизмы. Часть этих дезсредств может использоваться не только для дезинфекции, но и для стерилизации инструментария, а также для проведения дезинфекции эндоскопического оборудования по  режиму ДВУ. Из этой группы чаще всего используются Гигасепт ФФ, Сайдекс, Лизоформин 3000, Секусепт Форте.

Спирты. Это группа препаратов на основе этанола, пропанола, изопропанола. Такие средства как Бациллол плюс, Деконекс Соларсепт используют для дезинфекции поверхностей и оборудования. 70 % этиловый спирт используется как кожный асептик.

Среди фенолсодержащих препаратов можно рекомендовать Амоцид и Амоцид 2000, которые эффективны для проведения текущей и заключительной дезинфекции в очагах туберкулеза для обеззараживания биоматериала от больных.

Как проводят дезинфекцию

Медицинские изделия погружают в дезраствор сразу же после их использования. При этом дезраствор должен полностью покрывать инструменты не менее 1 см над их поверхностью. Изделия сложной конфигурации дезинфицируют в разобранном виде. Каналы и полости изделий заполняют дезинфицирующим раствором так, чтобы в них не оставалось пузырьков воздуха. Сильно загрязненные инструменты нужно подвергать двукратной обработке.

Хлорсодержащие средства, например, Хлорамин Б, Клорсепт, применяют в основном для дезинфекции изделий медицинского назначения из стекла, пластмассы, резины, коррозионно-стойкого материала или отработанного перевязочного материала и одноразовых инструментов. Очистка с помощью ерша резиновых изделий не допускается!

Для дезинфекции многоразового металлического инструментария рекомендуется использовать препараты, которые не вызывают коррозии. Правда, эти дезсредства стоят дороже. Но экономить не стоит. Ведь стоимость металлических многоразовых инструментов намного выше.

По окончании дезинфекционной выдержки изделия промывают. Оставшиеся загрязнения оттирают с помощью ершей, щеток, салфеток под проточной питьевой водой либо в специальных моющих аппаратах.

Обратите внимание. Поскольку альдегидосодержащие дезсредства достаточно токсичны, при работе с ними персоналу следует соблюдать особые меры предосторожности:

* рабочие растворы из концентратов готовьте в отдельных хорошо вентилируемых помещениях с достаточной кубатурой;

* во время приготовления рабочих растворов и при работе с ними защищайте органы дыхания респираторами, кожу рук перчатками, а глаза очками;

* рабочие растворы должны находиться только в емкостях с плотно закрытыми крышками! Используйте специальные ванночки — стерилизаторы из полиэтилена. Емкость следует открывать только при необходимости, защищая органы дыхания;

* нельзя разводить исходный концентрат теплой и тем более горячей водой. Это усиливает  вредные испарения с поверхности раствора;

* промывка изделий под проточной водой до дезинфекции не допускается. Ведь аэрозоль, образующийся в процессе мытья, может инфицировать персонал, проводящий обработку, а также поверхности помещений. Подчеркнем, однако, что при применении многих альдегидосодержащих дезинфектантов очистка медицинских изделий от загрязнения  все же необходима. Дело в том, что такие дезинфектанты фиксируют белковые загрязнения. Это затрудняет процесс дезинфекции. Поэтому предварительная очистка в данном случае должна проводиться с соблюдением противоэпидемических принципов. Используются специальные емкости. Промывные воды, салфетки, использованные для очистки, обеззараживаются одним из хлорсодержащих дезинфектантов.

 

Практическими вопросами проведения дезинфекции в любом ЛПУ занимаются в основном медицинские сестры. А вот задача администрации медучреждения — обеспечить приобретение эффективных дезпрепаратов, замену их с периодичностью не реже 8-12 месяцев, чтобы предотвратить формирование антибиотикоустойчивых микроорганизмов. На сегодня поставщики предлагают ЛПУ десятки различных дезинфектантов. Реклама у продавцов напористая, сделать правильный выбор не так-то легко.

В письме от 25.01.2006 № 0100/626-06-32 Роспотребнадзор предписал при выборе реагентов для дезинфекции руководствоваться государственным реестром зарегистрированных дезсредств. Найти этот реестр можно, в частности, на информационных ресурсах Роспотребнадзора в сети Интернет.

Перечни некоторых зарегистрированных в нашей стране дезинфицирующих средств доводятся  и специальными письмами Роспотребнадзора. Например, перечень дезсредств, обладающих вирулицидной активностью, отечественного и зарубежного производства приведен в письме Роспотребнадзора от 07.03.2006 № 0100/2490-06-32.

Предстерилизационная обработка

Для инструментария, который соприкасается со слизистыми оболочками и ранами, в том числе операционными, одной дезинфекции недостаточно. Требуется стерилизация. Но перед этим проводят предстерилизационную обработку. Цель — удаление всех мелких частиц, оставшихся после операции, различных белковых загрязнений.

При предстерилизационной обработке используют специально приготовленные растворы, в которые входят вода, перекись водорода и моющие средства «Астра», «Лотос», «Айна», «Прогресс». Можно также применять дезинфектанты, специально предусмотренные для совмещения дезинфекции с предстерилизационной обработкой. Такие препараты очень удобны в работе, позволяют экономить рабочее время персонала, тем самым сокращая затраты ЛПУ. В настоящее время выбор комбинированных препаратов достаточно широк.

При предстерилизационной очистке разъемные медицинские изделия замачиваются в разобранном виде. Все предметы полностью погружаются в раствор с заполнением всех полостей. О качестве же дезинфекции и предстерилизационной подготовки медицинского инструментария судят по результатам биологических и химических анализов.

Важно. Контроль качества предстерилизационной очистки проводят  в ЛПУ ежедневно, под руководством старшей медицинской сестры. Проверке подлежит 1 % изделий от партии, но не менее трех единиц. Качество очистки оценивают путем постановки азопирамовой пробы на наличие остаточных количеств крови, а также путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств. При положительной азопирамовой пробе не позднее чем через 1 минуту после нанесения реактива появляется фиолетовое окрашивание, которое вскоре переходит в розово-сиреневое или буроватое.     

При положительной фенолфталеиновой пробе о наличии на изделиях остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства свидетельствует появление розового окрашивания реактива. Если пробы на кровь или на остатки щелочных компонентов моющих средств, оказываются положительными, всю партию изделий повторно очищают до получения отрицательных результатов.

Стерилизация

Как мы уже говорили, оборудование и инструменты, которые проникают в стерильные ткани организма или сосуды, контактируя с кровью или инъекционными растворами, относятся к «критическим» предметам. Они должны пройти стерилизацию, чтобы полностью удалились или уничтожились всех виды микроорганизмов, включая споры бактерий. Стерилизация не может быть относительной, она всегда абсолютна! В медицинской практике применяются в основном три вида стерилизации.

Таблица 1. Виды стериализации.

Виды стерилизации

Методы стерилизации

Действующий агент

физический

паровой

воздушный

гласперленовый

инфракрасный

пар под избыточным давлением

(120 °С, давление 1,1 атм)

(132 °С, давление 2,0 атм)  

сухой воздух при 180 °С

нагретые стеклянные шарики при 190–240 °С

инфракрасное излучение при 200+3 °С

химический

жидкостной

плазменный

растворы химических соединений

(альдегид-, кислород-, хлорсодержащих)

пары 20 % пероксида водорода

газовый

окись этилена в смеси с углекислым газом, бромистым метилом и др.

Поясняем. При стерилизации горячим воздухом возбудители болезней уничтожаются высокой температурой 180°С в суховоздушном стерилизаторе. В случае подобной стерилизации в автоклаве эффект достигается уже при 120 °С. Инструменты в него укладывают так, чтобы они не касались друг друга. Для контроля стерилизации используют химические тесты, которые укладывают на каждую полку суховоздушного стерилизатора в виде конверта в 5 точках по четырем краям и в середине. Если хотя бы один химический тест не изменил цвет, стерилизацию всей партии инструментов проводят заново. Обратите внимание, что сроки хранения стерильного материала после этой процедуры незначительные – до 1 суток.

Об успешном проведении стерилизации можно говорить при соблюдении следующих параметров обработки: температурный режим, давление пара, время воздействия (экспозиция).

            Таблица 2. Режимы стерилизации некоторых медицинских инструментов

Способ стерилизации

Температура,

°С

Давление,

кгс/кв.см

Экспозиция,

мин.

Материал обрабатываемых изделий

Сухим горячим воздухом (суховоздушный стерилизатор)       

180

60

металл, стекло

Водяным насыщенным паром под избыточным давлением  (автоклав)     

132

2,0

20

металл, стекло, текстильные материалы, резина

120

1,1

45

резина, латекс, отдельные полимерные материалы

Стерилизация горячим паром широко распространена в ежедневной медицинской практике. Ее достоинства – это короткий полный производственный цикл и невысокие температуры. Автоклавная техника а последние годы усовершенствовалась и позволяет при доступном для ЛПУ уровне затрат обеспечивать жесткие требования клинических стандартов.

Одним из основных условий проведения качественной стерилизации является загрузка автоклава в точном соответствии с рекомендациями производителя. Это означает правильное расположение и количество загружаемых предметов. Водяной пар должен свободно циркулировать, а конденсат своевременно выводиться. При загрузке автоклава обратите внимание на то, чтобы тяжелые инструменты располагались на нижних поддонах, а легкие — на верхних.

Изделия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемым изделиям. Не допускается перекрывать продувочные окна и решетки вентиляции. Загрузку и выгрузку изделий проводят при температуре не выше 40-50°С.

Для контроля стерилизации в каждый бикс закладывают специальные термоиндикаторы. Они должны располагаться на трех разных уровнях — нижнем, среднем, верхнем — и позволяют осуществлять как внешний (в камере стерилизатора) и внутренний (в упаковке с изделиями) контроль. После окончания стерилизации и обязательно до использования стерильного материала проверяют тесты. Они должны изменить цвет. Если хотя бы одна полоска не изменила цвет, весь материал повторно стерилизуют.

Срок хранения простерилизованных изделий: в биксах без фильтра, в двойной мягкой упаковке – 3 суток; в пергаменте, бумаге мешочной непропитанной, мешочной влагопрочной, бумаге упаковочной высокопрочной, бумаге крепированной, стерилизационной коробке с фильтром – 20 суток.

Виды стерилизаторов. Плюсы и минусы

Существуют стерилизаторы, в которых используется метод, основанный на применении кратковременного импульсного инфракрасного излучения, создающего в рабочей камере температуру 200+3°С. Время инфракрасной стерилизации инструментария в неупакованном виде составляет от 10 до 25 минут, включая этапы выхода на режим и охлаждения. Однако недостатками такой стерилизации являются отсутствие упаковки инструментов, повреждающее воздействие на полимерные материалы и резину, наконец, отсутствие контролирующих индикаторов.

В настоящее время появляется различная аппаратура для стерилизации мелких инструментов. В качестве примера можно привести гласперленовый стерилизатор. Он представляет собой камеру, наполненную стеклянными шариками, которые нагреваются до температуры 190-240°С. Такой метод стерилизации используется в стоматологии. Однако и он имеет недостатки: можно применять лишь для мелких цельнометаллических инструментов без упаковки. Они стерилизуются в течение 5-15 секунд. У более крупных инструментов для такой обработки доступна только рабочая часть. А полная их стерилизация даже при увеличении экспозиции не удается. Проблемы возникают и со средствами контроля работы этих стерилизаторов.

Недостатком стерилизации жидкими химическими средствами является возможное наличие на очищенном инструментарии следов очистки — остатков токсичных бактерицидных средств. Кроме этого необходимо наличие стерильных емкостей, причем не менее двух, со стерильной дистиллированной водой для отмывания стерилизующего агента. При химической стерилизации может наступать загрязнение микроорганизмами простерилизованных инструментов. 

Стерилизация газовым методом более надежна, но технически она весьма сложна. Для нее необходимы особые помещения, аппаратура, согласование с органами санитарного надзора. Тем не менее иногда этому методу нет альтернативы. Ведь не всякая медицинская техника выдержит температурную и жидкостную стерилизацию. К примеру, оптические инструменты, электрооборудование. Но стерилизация газовым методом с применением окиси этилена и формальдегида в России широко не применяется, так как пока разработки отечественной аппаратуры находятся на начальной стадии. В некоторых ЛПУ используют зарубежные газовые стерилизаторы. Заметим, что это оборудование достаточно дорогое. Плюсом стерилизации газовым методом является возможность использования упаковки материалов, которые могут храниться годами. Минусом, помимо его дороговизны, считается существенное время экспозиции (несколько часов), необходимость дегазации при помощи специальной аппаратуры, что дополнительно увеличивает длительность цикла стерилизации.

Существует современный, эффективный, но весьма дорогой метод стерилизации – плазменная очистка в низкотемпературных плазменных стерилизаторах SPS. Принцип работы этой аппаратуры основан на генерации плазмы непосредственно вокруг стерилизуемого материала. Стерилизующим агентом является 20 %-ный пероксид водорода. Процесс происходит в любой части камеры. Контроль температуры осуществляется инфракрасными датчиками. Стерилизация в этом случае представляет собой сухой процесс при температуре от +35 до +50 °С, что гарантирует сохранность инструментов и оборудования, чувствительного к повышенной температуре и влажности. Время стерилизации — от 90 до 120 минут.

Особенности очистки отдельных видов инструментов

Выше мы отнесли к «полукритическим» предметы, контактирующие со слизистыми оболочками или поврежденной кожей, например, ингаляторы и некоторые виды эндоскопов. «Полукритические» инструменты должны подвергаться ДВУ. Но некоторые эндоскопические инструменты относятся к «критическим» и подлежат стерилизации.

Обработка эндоскопов производится непосредственно после их использования и имеет свои особенности, отраженные в табл. 3.

Таблица 3. Порядок очистки эндоскопов

Эндоскопы, используемые для нестерильных эндоскопических манипуляций (гастрофиброскопия, бронхоскопия)

Эндоскопы, используемые для стерильных эндоскопических манипуляциях

 

1) предварительная очистка

2) окончательная очистка по методике предстерилизационной очистки

3) ДВУ спороцидными средствами

1) предварительная очистка

2) предстерилизационная очистка

3) стерилизация

Особенности очистки, дезинфекции, стерилизации эндоскопов и инструментов к ним содержатся в Методических указаниях МУ 3.5.1937-04, утвержденных Главным государственным санитарным врачом РФ 04.03.2004.

Особые хлопоты ЛПУ доставляет стерилизация термолабильных инструментов. К ним, в частности, относятся лапароскопы. Стерилизация газом окиси этилена или жидкими химическими средствами требует наличие специальной дорогостоящей техники (газовый метод), а также продолжительного времени. Поэтому чтобы не испортить инструмент, во многих стационарах используют дезинфекцию высокого уровня. Однако в отличие от стерилизации ДВУ не уничтожает полностью споры бактерий. Поэтому увеличивается риск инфицирования пациентов. И напомним, что эти изделия после очистки надо хранить в условиях, исключающих вторичное заражение микроорганизмами.

В заключение хочется подчеркнуть, что последовательное и четкое проведение в лечебных учреждениях всех мероприятий по проведению дезинфекции и стерилизации позволит значительно снизить уровень внутрибольничного инфицирования.  

Г.А. КУШНАРЕВА, госпитальный эпидемиолог

Тесты квалификационные по специальности «Дезинфектология» (2019 год) с ответами

 

содержание   ..    1  2   ..

 

 

 

 



 

 

1.      Некритические предметы ухода необходимо:

а) дезинфицировать

б) стерилизовать

2.      Резиновые грелки и пузырь для льда дезинфицируют:

а) 6% раствором перекиси водорода

б) 3% раствором хлорамина

в) 1% раствором хлорамина

г) 0,5% раствором хлорной извести

3.      Для дезинфекции выделений пациента используется:

а) сухая хлорная известь

б) 3% раствор хлорамина

в) 5% раствор перманганата калия. Выберите все правильные ответы.

4.      К физическому методу дезинфекции относятся:

а) УФО

б) кипячение

в) сжигание

г) проветривание

д) стирка

5.      На эффективность дезсредств влияет:

а) концентрация раствора

б) количество раствора

в) температура воздуха

г) влажность в помещении

д) экспозиция

6.      Сухую хлорную известь используют для обработки:

а) рвотных масс

б) инструментов

в) туалетов

г) крови и ее компонентов

7.      Температура моющего раствора составляет:

а) 40 С

б) 60 °С

в) 50 °С

г) 80 °С

8.      Инструменты в моющем растворе замачивают на:

а) 5 минут

б) 15 минут

в) 30 минут

г) 60 минут

9.      Концентрация перекиси водорода в приготовленном моющем растворе составляет:

а) 5%

б) 1%

в) 3%

10.  Положительная амидопириновая проба дает окрашивание:

а) сине-зеленое

б) розовое

в) красное

г) фиолетовое

11.  В ЦСО контроль качества предстерилизационной очистки от крови проводится 1 раз в:

а) день

б) месяц

в) год

г) неделю

12.  Моющий раствор используется до появления окраски:

а) фиолетовой

б) розовой

в) зеленоватой

г) синеватой

13.  При положительной фенолфталеиновой пробе изделия подлежат повторной: а) стерилизации;

б) дезинфекции

в) обработке в моющем растворе

г) очистке водой

14.  К пробам на качество предстерилизационной очистки от крови относятся:

а) амидопириновая

б) фенолфталеиновая

в) азопирамовая

г) судановая

15.  Для приготовления моющего раствора берут 5 г моющего средства и перекись водорода:

а) 3% раствора 160 мл

б) 3% раствора 80 мл

в) 6% раствора 80 мл

г) 6% раствора 160 мл

16.  Положительная азопирамовая проба дает окрашивание

а) розовое

б) голубое

в) фиолетовое

17.  При помощи какой пробы проверяют следы крови

а) судановая

б) фенолфталеиновая

в) амидопириновая

18.  При помощи какой пробы проверяют остатки моющего средства

а) судановая

б) фенолфталеиновая

в) амидопириновая

19.  При помощи какой пробы проверяют остатки жира

а) судановая

б) фенолфталеиновая

в) амидопириновая

20.  Стерильность инструментов в комбинированных пакетах составляет:

а) 1 год

б) 4 года

в) 3 года

г) 5 лет

21.  Режим стерилизации перчаток в паровом стерилизаторе составляет:

а) 2 атм, 45 минут — 132 °С

б) 2 атм, 10 минут — 120 °С

в) 1,1 атм, 45 минут — 120 °С

г) 1,1 атм, 20 минут — 132 °С

22.  К режиму стерилизации воздушным методом относится:

а) t=180 °С, 120 минут

б) t=180 «С, 60 минут

в) t=160 «С, 60 минут

г) t=120 °С, 45 минут

23.  Медицинские изделия в 2-слойной бязевой упаковке стерилизуют методом:

а) воздушным

б) паровым

24.  Методами контроля работы стерилизационной аппаратуры являются:

а) химический

б) бактериологический

в) физический

г) паровой

д) воздушный

25.  К режимам работы парового стерилизатора относят:

а) 132 °С — 20 минут, 2 атм

б) 132 °С — 45 минут, 2 атм

в) 120 °С — 60 минут, 1,1 атм

г) 120 С — 45 минут, 1,1 атм

26.  Химическую стерилизацию в 6% растворе перекиси водорода осуществляют при:

а) t=50 °С, 180 минут

б) t=50 °С, 120 минут

в) t=40 °С, 150 минут

г) t=18 С, 360 минут

27.  Укажите индикаторы стерильности внутри биксов

 а) стериконт

б) дезиконт

в) стеритест

28.  Укажите индикаторы стерильности внутри стерилизующей аппаратуры

 а) стериконт

б) дезиконт

в) стеритест

29.   Дезинфекция означает:

а) уничтожение патогенных микроорганизмов в организме человека

б) участие в ликвидации эпидемических очагов

в) уничтожение патогенных микроорганизмов в окружающей человека среде

г) уничтожение патогенных микроорганизмов в человеке и окружающей среде

д) уничтожение всех микроорганизмов в окружающей человека среде

30.   Дезинфекция — одна из мер в комплексе:

 а) профилактических мер

б) противоэпидемических мер

в) профилактических и противоэпидемических мер

г) гигиенических мер

д) лечебных мероприятий

31.   Заключительную дезинфекцию проводят:

а) в очаге после изоляции инфекционного больного                                                                    б) в очаге в период пребывания там инфекционного больного

в) когда источник инфекции не выявлен

г) в очагах сразу после выявления инфекционного больного

д) во всех перечисленных случаях

32.   Профилактическую дезинфекцию проводят с целью:

а) предупреждения возникновения инфекционных заболеваний на территории;

б) предупреждение возникновения инфекционных заболеваний в коллективе;

в) ликвидации возникших очагов;

г) защиты лиц, общавшихся с больным в очаге инфекции;

д) предупреждения возникновения инфекционных заболеваний и носительства на территории, в коллективах.

33.   Профилактическую дезинфекцию проводят:

а) в очаге после изоляции больного;

б) в очаге в период пребывания в нем больного;

в) когда источник инфекции не выявлен;

г) когда выявлен больной особо опасной инфекцией;

д) во всех перечисленных случаях.

34.   Показания для проведения заключительной дезинфекции:

а) начало заболевания у инфекционного больного;

б) выздоровление инфекционного больного;

в) госпитализация, выздоровление или смерть инфекционного больного;

г) установление диагноза инфекционного заболевания;

д) во всех перечисленных случаях.

35.   В каких случаях проводят заключительную дезинфекцию при псевдотуберкулезе:

а) во всех случаях

б) по указанию эпидемиолога

в) в квартирах

г) заключительную дезинфекцию не проводят

д) в общежитиях.

36.   Эффективность физических средств дезинфекции зависит от:

а) экспозиции

б) температуры

в) чувствительности возбудителя

г) особенностей объекта

д) от всего перечисленного.

37.   Химические дезинфицирующие средства применяют в виде:

а) растворов

б) аэрозолей

в) газов

г) правильно все перечисленное

д) правильного ответа нет.

38.   Способами дезинфекции химическими средствами не являются:

а) протирание

б) орошение

в) погружение

г) газация

д) кипячение.

39.   Показания для дезинфекционной обработки дезинфекционных бригад:

а) работа в очагах ООИ

б) работа в очагах педикулеза

в) после каждой дезинфекции

г) работа в очагах ООИ и педикулеза

д) работа в очагах дизентерии.

40.   Оснащение бригады, выезжающей в очаг чумы включает:

а) дератизационную укладку

б) дезинфекционную укладку

в) дезинсекционную укладку

г) набор для стерилизации

д) дезинфекционную, дератизационную и дезинсекционную укладки.

41.   Оснащение бригады, выезжающей в очаг холеры включает:

а) дератизационную укладку

б) дезинфекционную укладку

в) дезинсекционную укладку

г) дезинфекционную и дезинсекционную укладки

д) дезинфекционную, дератизационную и дезинсекционную укладки.

42.   Обработку мясокомбината, в случае поступления сырья, зараженного сибирской язвой проводит:

а) дезинфекционная бригада

б) дератизационная бригада

в) дезинсекционная бригада

г) ветеринарная служба

д) комплексная дезинфекционная бригада.

43.   Сроки проведения заключительной дезинфекции определяются:

а) инкубационным периодом инфекционного заболевания

б) сроками выживания возбудителя во внешней среде

в) сроком изоляции больного

г) сроком окончательного выздоровления больного

д) сроком удвоенного инкубационного периода.

44.   16. Заключительную дезинфекцию проводят после:

а) изоляции больного

б) госпитализации больного

в) смерти больного

г) выздоровления больного

д) во всех перечисленных случаях.

45.   Заключительную дезинфекцию проводят в целях:

а) полного освобождения очага от возбудителя инфекции

б) полного освобождения очага от патогенных микроорганизмов

в) уничтожения патогенных и непатогенных микроорганизмов в очаге

г) снижения количества микроорганизмов на объектах окружающей среды в очаге

д) правильно все перечисленное.

46.   Методы дезинфекции, используемые при заключительной дезинфекции:

а) физические

б) химические

в) биологические

г) физические и химические

д) возможно применение всех методов.

47.   Физические методы дезинфекции:

а) кипячение

б) орошение дезинфекционными средствами

в) замачивание в дезинфицирующем растворе

г) обработка аэрозолями

д) все перечисленные.

48.   Физическими средствами дезинфекции могут быть:

а) механические

б) термические

в) обработка солями тяжелых металлов

г) чистка пылесосами

д) все перечисленное.

49.   К физическим средствам дезинфекции относят:

а) горячий воздух

б) горячая вода

в) водяной пар

г) кипячение

 д) все перечисленные.

50.   К физическим средствам дезинфекции не относят:

а) пастеризация

б) замораживание

в) использование аэрозолей

г) ультрафиолетовое облучение

д) высушивание.

51.   Химические способы дезинфекции:

а) аэрозольный

б) воздушный

в) паровой

г) аэрозольный и газовый

д) все перечисленные.

52.   Химические дезинфицирующие средства не должны оказывать действие:

а) бактерицидное

б) бактериостатическое

в) фунгицидное

г) вирулицидное

д) спороцидное.

53.   В качестве химических средств дезинфекции не используют:

а) хлорсодержащие вещества

б) соединения йода, брома

в) кислородсодержащие

г) альдегидсодержащие

д) соли тяжелых металлов.

54.   В качестве химических средств дезинфекции используют:

а) соли тяжелых металлов

б) фенол

в) гуанидины и спирты

г) спирты

д) гуанидины.

55.   Какое требование, не предъявляется к химическим средствам дезинфекции:

а) хорошая растворимость в воде

б) действие в малых концентрациях

в) уничтожение микроорганизмов в короткие сроки

г) стойкость при хранении

д) высокая летучесть.

56.   Результаты дезинфекции улучшаются при изменениях температуры:

а) повышение температуры дезинфицирующего раствора

б) понижение температуры дезинфицирующего раствора

в) повышение температуры воздуха

г) при повышении температуры раствора и воздуха

д) правильно все перечисленное.

57.   К хлорсодержащим веществам не относят:

а) хлорная известь

б) нейтральный гипохлорит кальция

в) гипохлориты натрия и кальция

г) хлорамины

д) формалин.

58.   К хлорсодержащим веществам относят:

а) двутретьосновная соль гипохлорита кальция

б) пюржавель

в) клорсепт

г) анолит

д) все перечисленное.

59.   К хлорсодержащим веществам относят:

а) анолит

б) лизол

в) ПВК

г) септодор

д) все перечисленное.

60.   Эффективность дезинфекции зависит от:

а) концентрации раствора

б) времени выдержки

в) температуры раствора

г) правильно А и Б

д) правильно все перечисленное.

61.   При дезинфекции в очаге чумы предписано использовать защитный костюм:

а) первого типа

б) второго типа

в) третьего типа

г) правильно Б и В

д) всех типов.

62.   При дезинфекции в очаге сибирской язвы предписано использовать защитный костюм:

а) первого типа

б) второго типа

в) третьего типа

г) правильно А и В

д) всех типов.

63.   Предметы, подлежащие дезинфекции в дезинфекционных камерах:

а) матрацы, одеяла, подушки

б) обувь

в) уборочный инвентарь

г) мебель

д) матрацы, одеяла, подушки, обувь.

64.   Физические факторы, используемые при камерном обеззараживании:

а) воздух

б) формалин

в) паро-воздушная смесь

г) хлорамин

д) воздух, пар.

65.   Химические средства, используемые при камерной дезинфекции:

а) паро-воздушная смесь

б) водный раствор формальдегида

в) водяной пар

г) хлорамин

д) перекись водорода.

66.   Дезинфекционные камеры обеспечивают проведение дезинфекции:

а) паровой

б) паро-воздушной

в) пароформалиновой

г) паровой и воздушной

д) правильно все перечисленное.

67.   Дезинфекционные камеры обеспечивают проведение дезинфекции:

а) паровой

б) воздушной

в) газовой

г) паровой и воздушной

д) газовой и паровой.

68.   Камерной дезинфекции подлежат:

а) одежда

б) постельные принадлежности

в) книги

г) мягкие вещи

д) все перечисленное.

69.   Для контроля камерной дезинфекции используют следующие методы:

а) термический

б) биологический

в) механический

г) термический и биологический

д) механический и термический.

70.   В очагах кишечных инфекций при проведении текущей дезинфекции обычно применяют:

а) влажная уборка и мытье с использованием мыльно-содовых растворов

б) кипячение белья, посуды и т.д.

в) растворы дезинфицирующих средств для дезинфекции помещений

г) растворы дезинфицирующих средств для обеззараживания выделений

д) все перечисленное.

71.   В очагах кишечных инфекций при проведении заключительной дезинфекции обычно не применяют:

а) влажную уборку и мытье с использованием мыльно-содовых растворов

б) кипячение постельного белья, посуды, игрушек

в) растворы дезинфицирующих средств для дезинфекции помещений

г) растворы дезинфицирующих средств для обеззараживания выделений

д) камерную дезинфекцию.

72.   В очагах кишечных инфекций при проведении заключительной дезинфекции обычно не применяют:

а) влажную уборку и мытье с использованием мыльно-содовых растворов

б) камерное обеззараживание постельных принадлежностей

в) растворы дезинфицирующих средств для дезинфекции помещений

г) растворы дезинфицирующих средств для обеззараживания выделений

д) правильно все перечисленное.

73.   В очагах кишечных инфекций для дезинфекции обычно применяют:

а) двутретьосновная соль гипохлорита кальция (ДГСГК)

б) катамин АВ

в) нейтральный гипохлорит кальция

г) ДТСГК, хлорамин, хлорная известь

д) все перечисленное.

74.   В очагах кишечных инфекций для дезинфекции обычно применяют:

а) 1 % хлорамин, 1 % осветленный раствор хлорной извести для посуды

б) хлорная известь 200 г на 1 кг выделений

в) 0,2 % раствор хлорамина

г) 0,5 % р-р осветленной хлорной извести для орошения пола

д) все перечисленное.

75.   Для дезинфекции мокроты в очагах туберкулеза применяют:

а) нитран

б) ДГСГК

в) формальдегид

г) перекись водорода

д) лизол.

76.   Для дезинфекции сибиреязвенных скотомогильников в случае строительства на них применяют:

а) окись этилена и бромистый метил

б) активированный раствор хлорной извести

в) горячий раствор едкого натра

г) ДТСГК

д) лизол.

77.   Основанием для расчета потребности дезинфицирующих средств в ЛПУ является:

а) профиль лечебного учреждения

б) количество коек и обрабатываемых объектов

в) принцип проведения дезинфекции

г) количество койко-дней

д) принцип проведения дезинфекции и количество койко-дней.

78.   Приемное отделение ЛПУ должно иметь:

а) моющие средства

б) дезинфицирующие средства

в) инсектициды

г) бактерицидные ультрафиолетовые облучатели

д) все перечисленное.

79.   Приемное отделение ЛПУ должно иметь:

а) предметы ухода за больными

б) мешки для одежды больных

в) мыло, индивидуальные мочалки

г) инвентарь для уборки

д) все перечисленное.

80.   Для дезинфекции барокамеры, использующейся для лечения больных анаэробной инфекцией применяют:

а) 1 % амфолен

б) 3 % лизол

в) 5 % хлорамин

г) 6 % перекись водорода с добавлением 0,5 % моющих средств

д) 2 % янтарная кислота

81.   В группу галоидсодержащих средств входят:

а) хлорсодержащие и бромсодержащие

б) кислородсодержащие

в) кислоты

г) спирты

д) щелочи.

82.   К неорганическим хлорсодержащим средствам относятся:

а) хлорамины

б) хлорная известь

в) гипохлориты кальция и натрия

г) хлорная известь и гипохлориты

д) трихлоризоциануровая кислота.

83.   К органическим хлорсодержащим средствам относятся:

а) хлорамины

б) хлорная известь

в) дихлоризоциануровая кислота

г) хлорамины и дихлоризоциануровая кислота

д) правильно все перечисленное.

84.   Бромсодержащими препаратами являются:

а) дибромантин

б) аквабар

в) дихлорантин

г) дибромантин аквабар

д) правильно все перечисленное.

85.   Кислородосодержащими средствами являются:

а) перекись водорода

б) ПВК

в) септодор

г) перекись водорода и ПВК

д) аламинол.

86.   Поверхностно-активными дезинфектантами являются:

а) аламинал

б) дезэффект

в) велтолен

г) катамин АБ

д) все перечисленные.

87.   Дезинфицирующие средства, относящиеся к группе гуанидинов:

а) септодор

б) аламинол

в) септодор, аламинол

г) полисепт, фогуцид

д) все перечисленное.

88.   К альдегидсодержащим дезинфектантам относятся:

  а) септодор

б) бианол

в) гигасепт ФФ

г) септодор-форте

д) бианол, гигасепт ФФ, септодор-форте.

89.   В группу спиртов входят:

а) атмостерил аэрозоль

б) нью альфа аэрозоль

в) спирт этиловый

г) деконекс соларсепт

д) все перечисленное.

90.   В группу фенолсодержащих дезинфицирующих средств входят:

а) катамин АБ

б) демос

в) амоцид

г) лизол

д) амоцид и лизол.

91.   Бактерицидная активность хлорсодержащих дезинфекционных средств может изменяться в зависимости от:

а) рН раствора

б) температуры раствора

в) концентрации рабочего раствора

г) рН и температура

д) правильно все перечисленное.

92.   Для получения осветленного раствора нейтрального гипохлорита кальция необходимо отстаивать раствор в течение:

а) 30 мин

б) 1 час

в) 4 часа

г) 24 часа

д) 7 суток.

93.   К группе циануровых кислот относятся:

а) хлорцин

б) перамин

в) полисепт

г) ДП-2

д) хлорцин и ДП-4.

94.   К группе кислородсодержащих дезинфекционных средств относятся:

а) перамин

б) дезоксон-4

в) перформ

г) виркон

д) все перечисленные.

95.   Активаторами хлорсодержащих препаратов могут быть:

а) аммонийные соли

б) аммиак

в) хлорамин

г) аммиак и аммониевые соли

д) все перечисленное.

96.   Хлорамины можно использовать против патогенных организмов:

а) бактерий

б) вирусов

в) грибов

г) вирусов и грибов

д) всех перечисленных.

97.   Глутаровый альдегид обладает действием:

а) бактерицидным

б) спороцидным

в) вирулицидным

г) бактерицидным и спороцидным

д) правильно все перечисленное.

98.   Формальдегид можно нейтрализовать:

а) углекислым калием

б) углекислым натрием

в) аммиаком

г) гидроксидом натрия

д) перманганатом калия.

99.   На основе гуанидинов разработаны дезинфицирующие средства:

а) демос

б) катасепт

в) лизетол АФ

г) пливасепт 5 %

д) все перечисленные.

 

 

ответы

 

 

1.а

2.в

3.а

4.а,б,в

5.а,д

6.а,б,в

7.в

8.б

9.в

10.а

11.а

12.б

13.г

14.а,в

15. а,в

16.в

17.в

18.б

19.а

20.а

21.в

22.б

23. б

24.а,б,в

25.б,г

26.а,г

27.в

28. б

29.в

30.в

31.а

32.д

33.в

34.в

35.б

36.д

37.г

38.д

39.г

40.д

41.г

42.г

43.б

44.д

45.а

46.г

47.а

48.б

49.д

50.в

51.г

52.б

53.д

54.в

55.д

56.г

57.д

58.д

59.а

60.д

61.а

62.б

63.д

64.д

65.б

66.д

67.г

68.д

69.г

70.д

71.а

72.а

73.д

74.д

75.б

76.а

77.д

78.д

79.д

80.г

81.а

82.г

83.г

84.г

85.г

86.д

87.г

88.д

89.д

90.д

91.д

92.а

93.д

94.д

95.г

96.д

97.д

98.в

99.д

 

 

 

 

 

содержание   ..    1  2   ..

 

 

Проверка эффективности антисептиков и дезинфицирующих средств

Цели обучения

  • Опишите, почему используется фенольный коэффициент
  • Сравните и сопоставьте методы дисковой диффузии, использования-разбавления и использования для проверки эффективности антисептиков, дезинфицирующих и стерилизующих средств

Эффективность различных химических дезинфицирующих средств отражена в терминах, используемых для их описания. Химические дезинфицирующие средства сгруппированы по степени их активности, при этом каждая категория отражает типы микробов и вирусов, против которых эффективны входящие в состав дезинфицирующие средства.Гермициды высокого уровня обладают способностью убивать вегетативные клетки, грибки, вирусы и эндоспоры, что приводит к стерилизации при длительном использовании. Гермициды среднего уровня, как следует из их названия, менее эффективны против эндоспор и некоторых вирусов, а гермициды низкого уровня убивают только вегетативные клетки и некоторые вирусы в оболочке и неэффективны против эндоспор.

Однако несколько условий окружающей среды влияют на эффективность противомикробного агента и его эффективность.Например, особенно важна продолжительность воздействия, при этом более длительное воздействие увеличивает эффективность. Точно так же важна концентрация химического агента, при этом более высокие концентрации более эффективны, чем более низкие. Температура, pH и другие факторы также могут влиять на эффективность дезинфицирующего средства.

Один из методов определения эффективности химического агента включает протирание поверхностей до и после использования, чтобы подтвердить, поддерживается ли стерильное поле во время использования.Дополнительные тесты описаны в следующих разделах. Эти тесты позволяют поддерживать соответствующие протоколы дезинфекции в клинических условиях, контролировать рост микробов для защиты пациентов, медицинских работников и общества.

Фенольный коэффициент

Эффективность дезинфицирующего или антисептического средства можно определить несколькими способами. Исторически сложилось так, что эффективность химического агента часто сравнивали с эффективностью фенола, первого химического агента, использованного Joseph Lister .В 1903 году британские химики Сэмюэл Райдал (1863–1929) и Дж. Т. Эйнсли Уокер (1868–1930) разработали протокол для сравнения эффективности различных химических веществ с фенолом, используя в качестве тестовых организмов Staphylococcus. aureus (грамположительная бактерия) и Salmonella enterica серовар Typhi (грамотрицательная бактерия). Они подвергли тестовые бактерии воздействию антимикробных химических растворов, разведенных в воде на 7 дней.5 минут. Затем они рассчитали фенольный коэффициент для каждого химического вещества для каждой из двух протестированных бактерий. Коэффициент для фенола , равный 1,0, означает, что химический агент имеет примерно такой же уровень эффективности, как и фенол. Химический агент с фенольным коэффициентом менее 1,0 менее эффективен, чем фенол. Примером может служить формалин с фенольными коэффициентами 0,3 ( S. aureus ) и 0,7 ( S. enterica серовар Typhi). Химический агент с фенольным коэффициентом больше 1.0 более эффективен, чем фенол, такой как хлорамин, с фенольными коэффициентами 133 и 100 соответственно. Хотя фенольный коэффициент когда-то был полезным показателем эффективности, он больше не используется повсеместно, поскольку используемые условия и организмы были выбраны произвольно.

Подумай об этом

  • В чем разница между тремя уровнями эффективности дезинфицирующего средства?

Дисковый диффузионный метод

Диско-диффузионный метод включает применение различных химикатов для разделения стерильных бумажных фильтровальных дисков.Затем диски помещают на чашку с агаром, которая была засеяна бактерией-мишенью, и химические вещества диффундируют с дисков в агар, куда были засеяны бактерии. По мере роста «лужайки» бактерий наблюдаются зон подавления роста микробов в виде чистых участков вокруг дисков. Хотя существуют и другие факторы, которые влияют на размеры зон ингибирования (например, является ли агент водорастворимым и способным диффундировать в агаре), более крупные зоны обычно коррелируют с повышенной эффективностью ингибирования химическим агентом.Диаметр каждой зоны измеряется в миллиметрах.

Диско-диффузионный анализ используется для определения эффективности химических агентов против конкретного микроба. (а) Планшет инокулируют различными противомикробными дисками. Зона подавления вокруг каждого диска показывает, насколько эффективным является этот противомикробный препарат против конкретного тестируемого вида. (b) На этих чашках четыре противомикробных агента проверяются на эффективность в уничтожении Pseudomonas aeruginosa (слева) и Staphylococcus aureus (справа).Эти противомикробные препараты гораздо более эффективны при уничтожении S. aureus , о чем свидетельствует размер зон подавления. (кредит b: модификация работы Американского общества микробиологов)

Подумай об этом

  • При сравнении активности двух дезинфицирующих средств против одного и того же микроба с использованием диско-диффузионного анализа и предположении, что оба являются водорастворимыми и могут легко диффундировать в агаре, будет ли более эффективное дезинфицирующее средство иметь большую зону ингибирования или меньшую ?

Испытание на разбавление

Другие методы также используются для измерения эффективности химического агента в клинических условиях.Тест использование-разбавление обычно используется для определения эффективности дезинфекции химическим веществом неодушевленной поверхности. Для этого теста цилиндр из нержавеющей стали погружают в культуру целевого микроорганизма, а затем сушат. Затем цилиндр погружают в растворы дезинфицирующего средства различной концентрации на определенное время. Наконец, цилиндр переносят в новую пробирку, содержащую свежую стерильную среду, не содержащую дезинфицирующего средства, и эту пробирку инкубируют.Выживаемость бактерий подтверждается наличием мутности в среде, тогда как уничтожение целевого организма на цилиндре дезинфицирующим средством не вызывает помутнения.

Международная ассоциация официальных сельскохозяйственных химиков (AOAC), некоммерческая группа, которая устанавливает множество стандартов протоколов, определила, что минимум 59 из 60 повторов не должны показывать рост в таком тесте для достижения удовлетворительного результата, и результаты должны быть повторяется для разных партий дезинфицирующего средства и при выполнении в разные дни.Производители дезинфицирующих средств проводят тесты на разбавление для подтверждения заявлений об эффективности своих продуктов, как это определено EPA.

Подумай об этом

  • Выполняется ли тест на разбавление в клинических условиях? Почему?

Испытание при эксплуатации

Тест при использовании может определить, является ли активно используемый раствор дезинфицирующего средства в клинических условиях микробиологическим. Образец использованного дезинфицирующего средства объемом 1 мл разбавляют в 9 мл стерильной бульонной среды, которая также содержит соединение, инактивирующее дезинфицирующее средство.Затем на каждую из двух чашек с агаром вносят по десять капель, всего примерно 0,2 мл этой смеси. Один планшет инкубируют при 37 ° C в течение 3 дней, а другой — при комнатной температуре в течение 7 дней. Чашки контролируют на предмет роста микробных колоний. Рост пяти или более колоний на любой чашке предполагает, что в дезинфицирующем растворе присутствовали жизнеспособные микробные клетки и что он загрязнен. Такие тесты при использовании позволяют контролировать эффективность дезинфицирующих средств в клинических условиях.

Рис. 2. Используемые дезинфицирующие растворы в клинических условиях можно проверить с помощью теста на загрязнение микробами.

Подумай об этом

  • На что указывает положительный тест при эксплуатации?

Клиническое направление: Дженни, Разрешение

Этот пример завершает рассказ Дженни, начатый в книге «Контроль роста микробов».

Несмотря на лечение антибиотиками, симптомы у Дженни ухудшились. У нее развился пиелонефрит , тяжелая инфекция почек, и она была повторно госпитализирована в отделение интенсивной терапии (ОИТ).Ее состояние продолжало ухудшаться, и у нее появились симптомы септического шока . В этот момент ее врач назначил посев ее мочи, чтобы определить точную причину ее инфекции, а также тест на лекарственную чувствительность, чтобы определить, какие антибиотики будут эффективны против возбудителя. Результаты этого теста показали устойчивость к широкому спектру антибиотиков, включая карбапенемы, класс антибиотиков, которые используются как последнее средство при многих типах бактериальных инфекций.Это был тревожный результат, предполагающий, что инфекция Дженни была вызвана так называемым супербактериальным микробом : бактериальным штаммом, который выработал устойчивость к большинству широко используемых антибиотиков. В этом случае возбудитель принадлежал устойчивым к карбапенемам Enterobacteriaceae (CRE) , устойчивому к лекарствам семейству бактерий, обычно встречающихся в пищеварительной системе. Когда CRE попадает в другие системы организма, что может произойти через неправильно очищенные хирургические инструменты, катетеры или эндоскопы, могут возникнуть агрессивные инфекции.

Инфекции

CRE, как известно, трудно поддаются лечению, летальность составляет 40–50%. Чтобы вылечить инфекцию почек и септический шок, Дженни лечили диализом, внутривенными вливаниями и лекарствами для поддержания артериального давления и предотвращения свертывания крови. Ей также начали агрессивное лечение с внутривенного введения нового препарата под названием тигециклин , который оказался успешным в лечении инфекций, вызванных лекарственно-устойчивыми бактериями.

После нескольких недель в отделении интенсивной терапии Дженни вылечилась от инфекции CRE.Однако вскоре представители общественного здравоохранения заметили, что случай Дженни не был единичным. У нескольких пациентов, которые прошли аналогичные процедуры в той же больнице, также развились инфекции CRE, некоторые из которых в результате умерли. В конечном итоге источник инфекции был установлен на дуоденоскопы, использованные в процедурах. Несмотря на то, что персонал больницы неукоснительно следовал протоколам производителя по дезинфекции, бактерии, в том числе CRE, оставались внутри инструментов и были представлены пациентам во время процедур.

Рис. 3. CRE — это штамм бактерий с чрезвычайно высокой лекарственной устойчивостью, который обычно ассоциируется с внутрибольничными инфекциями. (кредит: Центры по контролю и профилактике заболеваний)

Кто несет ответственность?

Устойчивые к карбапенемам Enterobacteriaceae инфекции, вызванные зараженными эндоскопами, стали в последние годы серьезной проблемой. Несколько вспышек CRE были отслежены с помощью эндоскопов, в том числе случай в Медицинском центре Рональда Рейгана UCLA в начале 2015 года, когда 179 пациентов могли подвергнуться воздействию зараженного эндоскопа.У семи пациентов развились инфекции, а двое позже скончались. Против компании Olympus, производителя эндоскопов, было подано несколько судебных исков. Некоторые утверждают, что Olympus не получил одобрения FDA на изменения конструкции, которые могли привести к загрязнению, а другие утверждают, что производитель сознательно скрыл информацию от больниц относительно дефектов эндоскопов.

Подобные судебные иски поднимают вопросы об ответственности, на которые сложно ответить. Инвазивные процедуры по своей природе опасны, но отрицательные результаты можно свести к минимуму, строго соблюдая установленные протоколы.Однако кто несет ответственность за отрицательные результаты из-за неправильных протоколов или неисправного оборудования? Могут ли больницы или медицинские работники нести ответственность, если они неукоснительно соблюдали некорректную процедуру? Следует ли привлекать производителей к ответственности и, возможно, выгнать их из бизнеса, если их спасательное оборудование выйдет из строя или будет обнаружено дефект? Какова роль правительства в обеспечении безотказной работы и обслуживания медицинского оборудования и протоколов?

Протоколы очистки или стерилизации медицинского оборудования часто разрабатываются государственными учреждениями, такими как FDA, и другими группами, такими как AOAC, некоммерческой научной организацией, которая устанавливает множество протоколов для стандартного использования во всем мире.Эти процедуры и протоколы затем принимаются производителями медицинского оборудования и оборудования. В конечном итоге конечные пользователи (больницы и их персонал) несут ответственность за соблюдение этих процедур и могут нести ответственность, если произойдет нарушение и пациенты заболеют из-за неправильно очищенного оборудования.

К сожалению, протоколы не безупречны, и иногда для выявления их недостатков требуются отрицательные результаты. В 2008 году FDA одобрило протокол дезинфекции эндоскопов с использованием глутарового альдегида (в более низкой концентрации при смешивании с фенолом), о-фталевого альдегида, перекиси водорода, перуксусной кислоты и смеси перекиси водорода с надуксусной кислотой.Однако последующие вспышки CRE при использовании эндоскопов показали, что сам по себе этот протокол был неадекватным.

В результате вспышек CRE больницы, производители и FDA изучают решения. Многие больницы вводят более строгие процедуры очистки, чем те, которые предписаны FDA. Производители ищут способы перепроектировать дуоденоскопы, чтобы минимизировать труднодоступные щели, где бактерии могут ускользнуть от дезинфицирующих средств, а FDA обновляет свои протоколы. В феврале 2015 года FDA добавило новые рекомендации по тщательной ручной очистке подъемного механизма дуоденоскопа (место, где микробы с наибольшей вероятностью избежали дезинфекции) и выпустило более тщательную документацию о контроле качества протоколов дезинфекции.

Нет гарантии, что новые процедуры, протоколы или оборудование полностью устранят риск заражения, связанный с эндоскопами. Тем не менее, эти устройства успешно используются в 500 000–650 000 процедур ежегодно в Соединенных Штатах, многие из которых спасают жизнь. В какой момент риски перевешивают преимущества этих устройств и кто должен нести ответственность за негативные результаты?

Рис. 4. Подъемный механизм дуоденоскопа содержит щели, которые трудно дезинфицировать.Патогены, пережившие протоколы дезинфекции, могут передаваться от одного пациента к другому, вызывая серьезные инфекции. (кредитные «фотографии»: модификация работы Центров по контролю и профилактике заболеваний)

Ключевые концепции и резюме

  • Химические дезинфицирующие средства сгруппированы по типам микробов и инфекционных агентов, против которых они эффективны. Гермициды высокого уровня убивают вегетативные клетки, грибки, вирусы и эндоспоры и в конечном итоге могут привести к стерилизации. Гермициды промежуточного уровня не могут убить все вирусы и менее эффективны против эндоспор. Гермициды низкого уровня убивают вегетативные клетки и некоторые вирусы в оболочке, но неэффективны против эндоспор.
  • На эффективность дезинфицирующего средства влияют несколько факторов, включая продолжительность воздействия, концентрацию дезинфицирующего средства, температуру и pH.
  • Исторически эффективность химического дезинфицирующего средства сравнивалась с эффективностью фенола при уничтожении Staphylococcus aureus и Salmonella enterica серовара Typhi, и был рассчитан фенольный коэффициент .
  • Диско-диффузионный метод используется для проверки эффективности химического дезинфицирующего средства против конкретного микроба.
  • Тест на разбавление определяет эффективность дезинфицирующего средства на поверхности. Испытания при использовании могут определить, правильно ли используются дезинфицирующие растворы в клинических условиях.

Множественный выбор

Какой тип теста используется для определения того, правильно ли используются дезинфицирующие растворы, активно используемые в клинических условиях?

  1. диско-диффузионный анализ
  2. Тест фенольного коэффициента
  3. Испытание в эксплуатации
  4. Испытание на разбавление
Показать ответ

г.Тест при использовании используется для определения того, правильно ли используются дезинфицирующие растворы, активно используемые в клинических условиях.

Эффективность химических дезинфицирующих средств исторически сравнивалась с эффективностью какого из перечисленных ниже средств?

  1. фенол
  2. этиловый спирт
  3. отбеливатель
  4. формальдегид
Показать ответ

а. Исторически эффективность химических дезинфицирующих средств сравнивали с фенолом.

Что из перечисленного относится к гермициду, который может убивать вегетативные клетки и некоторые вирусы в оболочке, но не эндоспоры?

  1. гермицид высокого уровня
  2. Бактерицид среднего уровня
  3. Бактерицид низкого уровня
  4. стерилизатор
Показать ответ

г.Гермицид низкого уровня может убивать вегетативные клетки и некоторые вирусы в оболочке, но не эндоспоры.

Заполните бланк

Если химическое дезинфицирующее средство более эффективно, чем фенол, то его фенольный коэффициент будет ________, чем 1,0.

Покажи ответ

Если химическое дезинфицирующее средство более эффективно, чем фенол, то его фенольный коэффициент будет на больше, чем , чем 1,0.

При длительном использовании ________ бактерициды могут привести к бесплодию.

Покажи ответ

Высококачественные бактерицидные препараты , применяемые в течение продолжительного периода времени, могут привести к стерильности.

В диско-диффузионном анализе большая зона ингибирования вокруг диска, на который было нанесено химическое дезинфицирующее средство, указывает на ________ тестового микроба по отношению к химическому дезинфицирующему средству.

Покажи ответ

В диско-диффузионном анализе большая зона ингибирования вокруг диска, на который было нанесено химическое дезинфицирующее средство, указывает на восприимчивость или чувствительность исследуемого микроба к химическому дезинфицирующему средству.

Подумай об этом

  1. Почему химические дезинфицирующие средства когда-то часто сравнивали с фенолом?
  2. Почему продолжительность воздействия химического дезинфицирующего средства важна для его действия?
  3. Каковы некоторые преимущества тестов на разбавление и использование по сравнению с диско-диффузионным анализом?

Валидация протоколов дезинфекции

15 июня 2016 г.

Мониторинг | Уборка

Регулирующие органы требуют доказательств того, что процедуры дезинфекции, используемые в чистых помещениях, являются эффективными, и хотя дезинфицирующие средства одобрены поставщиком, необходимо также доказать, что их эффективность соответствует сценарию реального использования.Д-р Аксель Верманн, SGS Life Sciences, описывает процесс

Необходимо постоянно контролировать успех процесса дезинфекции

В фармацевтическом чистом помещении переносимые по воздуху грамположительные бактерии представляют собой серьезную проблему, поскольку они могут загрязнять любую поверхность в производственной зоне. Грамотрицательные бактерии, которые обычно вводятся операторами в чистом помещении, также являются проблемой, и их, как правило, труднее искоренить.Еще один уровень сложности добавляет склонность грамположительных бактерий к образованию спор, которые, как известно, трудно уничтожить с помощью дезинфицирующих средств.

Выбор дезинфицирующего средства зависит от характера микробного загрязнения, которое присутствует или возможно в производственной зоне. В целом, использование дезинфицирующих средств четвертичного аммония (четвертичных) является достаточным в обычной практике. Эти четвертичные соединения связываются с внешней поверхностью грамположительных бактерий, которые обычно несут отрицательный заряд, и это связывание нарушает клеточную мембрану и убивает бактерии.Поверхность грамотрицательных бактерий менее отрицательно заряжена, поэтому сами по себе четвертичные кислоты не так эффективны. Сниженной эффективности можно противодействовать добавлением, например, компонентов гуанидина или глюкопротамина к четвертичным соединениям; эта комбинация также поможет удалить дрожжи и плесень.

Сильное заражение, особенно если присутствуют споры, потребует применения более жестких дезинфицирующих средств, но у них есть недостатки. Часто используется перуксусная кислота, которая действует путем окисления белков мембран бактерий и фосфолипидов и нарушает работу компонентов внутри клетки, таких как рибосома.Однако он очень неспецифический, кислотный и коррозионный, и вызывает повреждение поверхностей, на которые он наносится. Поэтому он не подходит для обычной дезинфекции.

Другие варианты включают дезинфицирующие средства на спиртовой основе, но они не подходят для больших поверхностей из-за образования аэрозолей и воспламеняемости. Однако они работают быстро, с ними легко обращаться и они не повреждают материалы, как перуксусная кислота. Их действие также неспецифично, поскольку они снижают растворимость мембранных белков, что приводит к разрушению мембранного потенциала.Дезинфицирующие средства типа хлорированного отбеливателя также можно использовать при определенных обстоятельствах, и они гораздо чаще используются в США, чем в Европе.

Три шага к проверке

Есть три основных этапа, связанных с валидацией процесса дезинфекции. Во-первых, необходимо использовать квалифицированное дезинфицирующее средство. Он должен быть сертифицирован поставщиком, что подходит для этой цели.

Второй шаг — проверка его дезинфицирующего действия на предприятии. По большей части поставщик проверяет дезинфицирующее средство только на стандартной поверхности (например, на стандартной поверхности).грамм. нержавеющая сталь). Относительно легко удалить бактерии и другие микроорганизмы с такой гладкой, не впитывающей поверхности, но это не относится ко многим другим поверхностям в производственной зоне, таким как полы, сайдинги и даже занавески. Все материалы, используемые в чистом помещении, должны проверяться на дезинфицирующую активность.

Наконец, необходимо постоянно контролировать успешность процесса дезинфекции. Необходимо собрать данные и провести статистическое сравнение с созданием пределов предупреждений и действий.Эти ограничения должны быть достаточно строгими, чтобы обеспечить хороший контроль за процессом очистки и дезинфекции.

Тестирование дезинфицирующих средств

Испытания обычно проводятся на плитках размером 5 x 5 см на рассматриваемой поверхности (носитель для испытаний), которые сначала заражены соответствующим микроорганизмом. Дезинфицирующее средство применяется в той концентрации, в которой оно используется на практике, и оставляется на соответствующее время. Затем его бросают в химический стакан с нейтрализующим раствором, прежде чем промыть.Наконец, микроорганизмы, присутствующие в промывочном растворе, исследуют, либо инкубируя раствор непосредственно на чашках с агаром, либо фильтр инкубируют на агаре после мембранной фильтрации с последующим подсчетом.

Основная цель испытаний — имитировать условия, существующие в производственной зоне в лабораторных условиях. Важно отметить, что это означает, что для тестирования потребуется гораздо больше параметров, чем предусмотрено стандартными методами. Эти стандартные методы определяют определенные микроорганизмы (например,грамм. Pseudomonas aeruginosa ATCC 15442, Staphylococcus aureus ATCC 6538, Enterococcus hirae ATCC 10541, Escherichia coli ATCC 10536, Candida albicans ATCC 10231, Aspergillus brasiliensis 40, Aspergillus brasiliensis 40, но Aspergillus brasiliensis 40, но Aspergillus brasiliensis также ожидайте, что будут использоваться изоляты из реальной среды. Это означает, что каждое дезинфицирующее средство нужно будет протестировать на 8-12 различных микроорганизмы.

Также необходимо установить правильное время контакта, что особенно важно, учитывая, что многие производители рекомендуют разное время для одного и того же дезинфицирующего средства.Они могут предложить 10 минут, при необходимости увеличив до 60 минут, и, таким образом, следует проверить время контакта 10 и 60 минут.

Три контроля запускаются параллельно: один — положительный контроль без дезинфицирующего средства, второй — для подтверждения того, что раствор для нейтрализации не влияет на бактерии, и контрольный контроль восстановления. Разница в количестве бактерий между обработанным образцом и положительным контролем дает представление об эффективности дезинфекции, и может быть рассчитан коэффициент уменьшения.

Испытания должны проводиться на всех материалах, имеющихся в чистом помещении, поэтому потребуются образцы плиток из стекла, оргстекла, алюминия, тканей ПВХ и напольных покрытий. При наличии до восьми материалов для тестирования при разном времени контакта и необходимости контроля необходимо выполнить не менее 100 тестов для одного дезинфицирующего средства. Фармакопея США и другие руководящие принципы требуют, чтобы тесты проводились в трех экземплярах, увеличивая число до 300 с лишним. После включения всех других используемых дезинфицирующих средств это означает, что для квалификации потребуется более 1000 индивидуальных тестов.

Это требует огромного количества ручной работы и, следовательно, огромных затрат времени и средств. Кроме того, большое количество задействованных шагов делает процесс уязвимым для ошибок, отсюда и необходимость запускать тесты в трех экземплярах для оценки воспроизводимости. Это достижимо только с хорошо подготовленной командой ученых-аналитиков.

Для сбора данных, подтверждающих эффективность протокола дезинфекции, требуется большой опыт работы в микробиологической лаборатории.

Внутренние трудности

Есть ряд других проблем, которые усложняют этот процесс.Некоторые носители можно использовать только один раз — например, обеззаразить ПВХ для второго теста, не повредив его, практически невозможно. Напротив, держатели из нержавеющей стали и стекла часто можно использовать более одного раза. Еще одна проблема — смачиваемость носителя. Очень трудно равномерно распределить водные растворы, содержащие микроорганизмы, на силиконовых материалах, например, поскольку поверхностное натяжение заставляет жидкость собираться, а не растекаться.

С микробными изолятами из чистого помещения может быть трудно работать, так как они могут быть повреждены и поэтому не растут так же хорошо, как эталонные штаммы.Это может вызвать трудности с положительным контролем, и, если для этого не могут быть достигнуты надежные результаты, нельзя полагаться и на остальные результаты.

Виды Pseudomonas представляют собой особую проблему, поскольку они не любят распространяться по поверхностям, предпочитая среду на водной основе. В результате изоляты могут погибнуть при отсутствии дезинфекции в течение обычного времени контакта, что повлияет как на тестовый образец, так и на положительный контроль. Эту ситуацию можно улучшить, если влажность в испытательной среде высока, так как скорость уничтожения в результате сушки будет снижена.Это лишь некоторые из причин, почему при проведении этих тестов ничто не заменит опыт.

Протокол валидации

При использовании подрядчика для валидации важно, чтобы все, что обсуждалось сторонами по поводу исследований, было задокументировано. Просто требуется так много работы и работы, результаты которой могут быть разными, что требования к повторным испытаниям, если это необходимо, должны быть сформулированы с самого начала. Стоит потратить некоторое время на протокол, чтобы обеспечить обработку возможных инцидентов в соответствии с требованиями GMP.

Несмотря на то, что существует целый ряд стандартизированных тестов, установленных различными стандартными платами, такими как методы ASTM (например, E2614-08) и AOAC (например, 966.04) из США, требования различаются, и нет ни одного стандарта, охватывающего все случайности. Одним из наиболее подробных методов тестирования дезинфицирующих средств на поверхностях является европейский стандарт EN 13697, который может служить основой для протокола проверки. При разработке процедуры валидации зачастую лучше всего собрать лучшие и наиболее важные элементы из нескольких стандартов и соединить их.Полученный протокол валидации следует обсудить с клиентом, и, если он соответствует всем требованиям, он должен быть полностью принят властями.

Необходимо провести испытания всех материалов, имеющихся в чистом помещении

Последним этапом программы валидации процесса дезинфекции является отслеживание его текущего успеха. Обычно это достигается с помощью таких процедур и методов, как контактные пластины, тампоны и промывка материала. Создается много данных, и необходимо проводить статистические сравнения, чтобы оценить влияние на дезинфекцию в пределах учреждения.Будут установлены уровни предупреждения и действия, выше которых потребуются корректирующие действия. Точные спецификации для них не приводятся в каких-либо руководящих принципах, поскольку они должны оцениваться и определяться специально для каждого отдельного объекта на основе всех данных, созданных и оцененных во время валидации и текущих испытаний.

Только одно из руководящих указаний, глава 1072 Фармакопеи США, устанавливает требования к эффективности дезинфекции; в Европе таких спецификаций нет.Фармакопея США утверждает, что обычно требуется 3-кратное сокращение, а для бактериальных спор — 2-кратное. Однако этого уменьшения особенно трудно добиться в случае спор; Обычно можно получить 1 журнал или даже 1,5 журнала, но достичь 2 журнала очень сложно.

Снижение на 90%, представленное 1 логарифмом, обычно возможно, но достичь показателя уничтожения 99 из 100, подразумеваемого уменьшением 2 логарифмов, невероятно сложно при использовании различных носителей для испытаний. Увеличение времени контакта или увеличение концентрации спороцидного дезинфицирующего средства — e.грамм. перуксусная кислота — только нанесет ущерб оборудованию и окружающей среде. Таким образом, реально для фармацевтического чистого помещения, вероятно, будет достаточно уменьшения на 1 логарифм, если только не будет необычно высокий уровень заражения спорами.

Во всех различных нормативных документах подчеркивается важность валидационных исследований для надлежащей дезинфекции, но с учетом различий в материалах, условиях и планировке между различными участками важно, чтобы каждый объект рассматривался как уникальная среда.Для сбора данных, подтверждающих эффективность протокола дезинфекции, требуется большой опыт работы в микробиологической лаборатории, а воспроизводимых результатов можно ожидать только в том случае, если отбор проб и тестирование проводится хорошо обученной командой, которая регулярно работает над этой задачей. Это не то, что обычная микролаборатория сможет успешно выполнить, и требуется специализированный персонал. Неопытность или недостаток внимания к деталям почти наверняка приведет к неудаче, а если дезинфекция не может быть доказана, риски для пациентов будут значительными.Эта точка зрения также отражена в нескольких предупредительных письмах, выпущенных FDA за последние годы.

Контроль дезинфекции SGS, отметка об очистке

Появление очень заразного нового коронавируса COVID-19 заставило потребителей, рабочих и других лиц больше, чем когда-либо прежде, беспокоиться о безопасности помещений, в которые они входят. Знак SGS «Контроль за дезинфекцией, проверка отмечена» гарантирует, что принимаются все необходимые меры для обеспечения соблюдения и поддержания имеющихся гигиенических стандартов дезинфекции и предотвращения распространения инфекции.

Почему стоит выбрать знак SGS «Контроль за дезинфекцией, отметка с отметкой о чистке»?

Знак четко указывает, что определенные помещения соответствуют Программе мониторинга дезинфекции SGS, и что это означает с точки зрения оценки дезинфекции. Он включает общедоступный QR-код, который показывает срок действия знака.

Знак остается в силе в течение одного года с даты успешного проведения первоначальной проверки и подтверждения выполнения всех требований.После завершения первоначальной оценки помещения должны проходить повторные проверки на месте два раза в месяц. Если первые две повторные проверки пройдены успешно, частота повторных проверок сократится до четырех месяцев. Чтобы сохранить отметку, помещения должны ежегодно проходить полную инспекцию.

О программе SGS по мониторингу дезинфекции

Услуги SGS под наблюдением за дезинфекцией, проверкой очистки основаны на:

  1. Настольный анализ пробелов в протоколах очистки и дезинфекции сайтов, чтобы гарантировать полноту и соответствие международным и местным руководствам
  2. Проверка этих процедур очистки и дезинфекции на месте для обеспечения последовательного и правильного выполнения соответствующих протоколов
  3. Проверочные испытания на месте с помощью флуоресцентной маркировки до и после очистки для оценки эффективности процедур очистки
  4. Отбор образцов мазков с поверхности в определенных точках касания с последующим анализом с помощью АТФ второго поколения для подтверждения наличия биологического материала как показателя эффективности очистки и дезинфекции поверхностей

Эта услуга не предназначена для того, чтобы гарантировать постоянное отсутствие SARS-CoV-2 в помещениях, и на нее нельзя полагаться.Мы предостерегаем от интерпретации статуса конкретного помещения на основании любого заявления SGS в отношении управления гигиеной и дезинфекцией таких помещений.

Никакая поддержка каких-либо помещений, продуктов или услуг, предлагаемых в этих помещениях, не выражается или не подразумевается какой-либо информацией, материалами или контентом, включенными на эту страницу.

Оператор проверенных помещений несет исключительную ответственность за активное применение методов и протоколов гигиены и дезинфекции на регулярной основе, а также за надлежащее обслуживание, осмотр и управление помещениями на постоянной основе [в этом отношении], включая обучение и контроль лиц, действующих на от их имени в таких помещениях.

Несмотря на то, что прилагаются все усилия для обеспечения точности и актуальности информации, содержащейся в знаке утверждения «Контроль дезинфекции, проверка чистки», SGS не может гарантировать точность, полноту или актуальность всей информации в любое время. SGS не несет ответственности за неточную, задержанную или неполную информацию, размещенную на этой странице.

Ведущий поставщик услуг по охране окружающей среды, здоровья и труда

Как ведущая мировая компания по инспектированию, проверке, тестированию и сертификации, SGS может помочь снизить риски для здоровья и безопасности, обеспечить соответствие нормативным требованиям и укрепить доверие среди ваших клиентов и заинтересованных сторон.

Свяжитесь с нами сегодня, чтобы узнать больше о контрольной отметке SGS «Мониторинг дезинфекции».

свяжитесь с нами

Эффективность дезинфекции — обзор

11.5 Остаточная концентрация хлора и время контакта

Из всех факторов, влияющих на эффективность дезинфекции хлора, рассмотренных выше, наиболее важными являются остаточная концентрация свободного хлора, время контакта, pH и температура воды. Термин «свободный остаток» относится к количеству свободного хлора, остающемуся после завершения процесса дезинфекции.При адекватной концентрации хлора и времени контакта все бактериальные организмы и большинство вирусов могут быть инактивированы. Таким образом, полезным критерием проектирования для процесса дезинфекции является произведение времени контакта ( t в минутах) и остаточной концентрации свободного хлора ( C в мг / л) в конце этого времени контакта. Это известно как «значение Ct » или «значение воздействия» (ВОЗ, 2011). Исходя из этого рекомендованный ВОЗ уровень свободной остаточной концентрации 0,5 мг / л после 30 минут контакта будет иметь значение Ct , равное 15 мг.мин / л. Показано, что это обеспечивает 12,5-кратный коэффициент безопасности, так что можно допустить некоторую неэффективность работы контактного резервуара (Stevenson, 1998).

Критерий Ct ВОЗ , равный 15 мг.мин / л, предназначен для воды, загрязненной фекалиями, и поэтому может варьироваться в зависимости от бактериологического качества исходной воды. Например, грунтовые воды, не содержащие E. coli и содержащие не более 10 колиформ на 100 мл, могут иметь значение Ct 10 мг.мин / л при т не менее 15 минут, а для грунтовых вод, где присутствуют бактерии кишечной палочки и Э.coli полностью отсутствуют, может быть приемлемо хлорирование, достаточное для поддержания остатка в системе распределения без контакта с очистными сооружениями. С другой стороны, для поверхностных вод будет использоваться более высокое значение Ct , например 30 мг мин / л, при этом т составляет не менее 30 минут, а C составляет 0,5–1,0 мг / л в зависимости от степень бактериального загрязнения. Если потребность в хлоре должна быть удовлетворена на стадии дезинфекции, следует увеличить C и т .

Цисты Giardia lamblia и кишечные вирусы более устойчивы к дезинфекции по сравнению с Legionella , гетеротрофными бактериями и колиформными бактериями. По этой причине они используются в Правилах очистки поверхностных вод США (SWTR) (US EPA, 1991) для определения необходимой эффективности дезинфекции для процесса обработки, включающего процессы разделения твердой и жидкой фаз и инактивацию путем дезинфекции. Правило требует, чтобы для сырой воды, содержащей в среднем 1 Giardia цист / 100 л, процессы должны достигать 3-кратного (99.9%) удаление цист Giardia lamblia и 4-логарифмическое (99,99%) удаление кишечных вирусов. Согласно SWTR, прямая фильтрация дается 2-логарифм для удаления Giardia и 1-логарифм для удаления вирусов, в то время как обычная очистка и фильтрация дает 2,5-логарифмический балл для Giardia и 2-логарифм для вирусы. Эти требования возрастают при повышении концентрации сырой воды Giardia . Это оставляет 0,5–1 логарифмическую инактивацию Giardia и 2–3 логарифмическую инактивацию вирусов путем дезинфекции.В таблицах 11.2 и 11.3 приведены значения Ct , указанные в SWTR для достижения 1-логарифмической инактивации Giardia и 2-х и 3-х логарифмической инактивации вирусов.

Таблица 11.2. Значения Ct для достижения 1-логарифмической инактивации Giardia lamblia

7,7
Дезинфицирующее средство pH Значение Ct при температуре воды
0,5 ° C 5 ° C 10 ° C 15 ° C 20 ° C 25 ° C
Свободный остаточный хлор 2 мг / л 6 49 39 29 19
7 70 55 41 28 21 14
8 101 81 61 904
9 146 118 88 59 44 29
Озон 6–9 0.97 0,63 0,48 0,32 0,24 0,16
Диоксид хлора 6–9 21 8,7 7,7 7,7 6–9 1270 735 615 500 370 250

Источник информации : US EPA (1991).

Таблица 11.3. Ct Значения для достижения 2- и 3-логарифмической инактивации энтеросолюбильных вирусов при значениях pH 6–9

Дезинфицирующее средство Лог-инактивация Значения Ct при температуре воды
0,5 ° C 5 ° C 10 ° C 15 ° C 20 ° C 25 ° C
Свободный остаточный хлор 2 6 4 3 3 3 1 1
3 9 6 4 3 2 1
Озон 2 0.9 0,6 0,5 0,3 0,25 0,15
3 1,4 0,9 0,8 0,5 0,4 0,5 0,4 0,25 904 904 8,4 5,6 4,2 2,8 2,1 1,4
3 25,6 17,1 12,8 8,6 6,4 4.3
Хлорамины 2 1243 857 643 428 321 214
3
3 2063 9046 904 904 2063 9046 904 904 9046 146 904

Источник информации : US EPA (1991).

Критерий Ct ВОЗ применим для инактивации бактерий и большинства вирусов и, следовательно, не может напрямую сравниваться со значениями Ct для инактивации цист, приведенными в таблице 11.2. Сравнение со значениями Ct в таблице 11.3 подтверждает, что критерий ВОЗ имеет высокий коэффициент безопасности, который желателен для обеспечения полной инактивации.

В выражении Ct время контакта t — это время, в течение которого вода остается в контактном резервуаре. Этот резервуар оснащен перегородками, и, если они отлиты из бетона, объем перегородок может значительно уменьшить объем внутри резервуара. Теоретическое время пребывания ( t T ) в контактном резервуаре — это объем воды в резервуаре, деленный на скорость потока.Этого можно достичь с помощью идеальных условий пробкового потока через резервуар. На практике водовороты и короткое замыкание в резервуаре приводят к тому, что некоторое количество воды проходит через резервуар быстрее, чем т T . Основными причинами короткого замыкания являются неравномерное распределение на входе (этого трудно избежать, поскольку вода обычно входит в резервуар в виде струи), перенаправление потока в конце перегородок и необходимость поднимать весь поток в резервуар. поверхность на выходе из водослива. Любое сжатие, расширение или изгиб пути потока из-за неидеальной компоновки приведет к еще большей неэффективности.Резервуары для контакта с хлором обычно проектируются таким образом, чтобы не менее 90% воды, проходящей через резервуар, оставалось в резервуаре дольше необходимого времени контакта при расчетной скорости потока. Это время упоминается как время t 10 , то есть время, необходимое для прохождения первых 10% воды через резервуар, или минимальный период, в течение которого 90% воды останется в резервуаре. Следует отметить, что этот критерий 10% не является универсальным стандартом, и иногда используется другой порог, например 5%.Отношение т 10 / т T является мерой короткого замыкания в контактном резервуаре и варьируется в диапазоне 0–1. Значение 1 указывает на идеальный поршневой поток, но на практике значение обычно варьируется от 0,6 до 0,8 для прямоугольного резервуара, разделенного на серию перегородок.

Оптимальная конструкция с т 10 / т T 0,7–0,8 может быть достигнута либо с помощью физического моделирования, либо с помощью моделей вычислительной гидродинамики (CFD) (таблица 21 (b) и раздел 14.18). При отсутствии этих инструментов предлагаются следующие основные конструктивные параметры: входная струя должна быть закрыта для рассеивания потока; резервуар должен быть разделен на длинные прямые и обратные каналы с отношением длины к ширине более 10 и отношением глубины к ширине менее 1,5; и водосливное отверстие должно быть предусмотрено для поддержания необходимого объема воды при всех условиях потока. При этих условиях может быть достигнуто значение т 10 / т T 0,6–0,7.Фактическое время контакта, обеспечиваемое новыми или существующими резервуарами, можно проверить, рассчитав время прохождения порции (импульсный ввод) или непрерывной (ступенчатый ввод) дозы индикаторного химического вещества, такого как хлорид лития или фторид натрия (Teefy, 1996) . Модели CFD можно использовать для моделирования трассерных тестов (табл. 21 (а)).

Трубопроводы идеально подходят для контакта, поскольку они обеспечивают хорошие характеристики поршневого потока, а соотношение т 10 / т T может превышать 0,95. Однако на практике его следует уменьшить примерно до 0.9, чтобы учесть изгибы и условия выхода и входа (возможно 0,8 при большом количестве изгибов). Трубопровод должен оставаться в границах участка очистных сооружений, чтобы контроль и мониторинг остаточного хлора на его нижнем конце был возможен и удобен.

Концентрация свободного остаточного хлора в воде, покидающей контактный резервуар, по истечении необходимого времени контакта, может быть уменьшена при желании путем частичного дехлорирования (Раздел 11.12) в соответствии с потребностями системы распределения.

IUVA выпускает информационный бюллетень по дезинфекции COVID-19 и УФ-С-диапазоном

Изображение предоставлено: Логотип любезно предоставлен IUVA.

Chevy Chase, MD (27 марта 2020 г.) Международная ассоциация ультрафиолетовых лучей (IUVA) считает, что технологии УФ-дезинфекции могут сыграть роль в многобарьерном подходе к снижению передачи вируса, вызывающего COVID-19, SARS-CoV-2 на основании текущих данных по дезинфекции и эмпирических данных. УФ — известное дезинфицирующее средство для воздуха, воды и поверхностей, которое может помочь снизить риск заражения при контакте с вирусом COVID-19 при правильном применении.«IUVA собрала ведущих экспертов со всего мира для разработки руководства по эффективному использованию УФ-технологии в качестве меры дезинфекции, чтобы помочь снизить передачу вируса COVID-19. IUVA была основана в 1999 году. развитие ультрафиолетовых технологий для решения проблем, связанных со здоровьем населения и окружающей средой », — говорит д-р Рон Хофманн, профессор Университета Торонто и президент IUVA.

Следует отметить, что термины «УФС», «УФ-дезинфекция» и «УФ», используемые здесь, а также в научной, медицинской и технической литературе, особенно и что важно, относятся к световой энергии УФС (свет 200-280 нм) в бактерицидном диапазоне. что не то же самое, что UVA и UVB, используемые в соляриях или при воздействии солнечного света.

Факты об УФ и COVID-19

Может ли УФС помочь предотвратить передачу COVID-19 за счет снижения загрязнения? Основываясь на имеющихся данных, мы так полагаем. Вот почему: свет

UVC широко используется более 40 лет для дезинфекции питьевой воды, сточных вод, воздуха, фармацевтических продуктов и поверхностей от целого ряда патогенов человека (обзор Fluence UV Dose Required, IUVA: https: // www.iuvanews.com/stories/pdf/archives/180301_UVSensitivityReview_full.pdf). Все бактерии и вирусы, протестированные на сегодняшний день (многие сотни за последние годы, включая другие коронавирусы), реагируют на УФ-дезинфекцию. Некоторые организмы более восприимчивы к УФ-дезинфекции, чем другие, но все протестированные до сих пор реагируют на соответствующие дозы.

  • УФ-дезинфекция часто используется с другими технологиями в мультибарьерном подходе, чтобы гарантировать, что любой патоген, не «убитый» одним методом (например, фильтрацией или очисткой), инактивирован другим (УФС).Таким образом, UVC можно было бы установить сейчас в клинических или других условиях, чтобы расширить существующие процессы или укрепить существующие протоколы, если они исчерпаны чрезмерными требованиями из-за пандемии.
  • УФ-свет, в частности, между 200-280 нм [i] (УФС или бактерицидный диапазон), инактивирует (иначе «убивает») по крайней мере два других коронавируса, которые являются близкими родственниками COVID-19 вирус: 1) SARS-CoV-1 [ii] и 2) MERS-CoV [iii] [iv] [v] .Важным предостережением является то, что эта инактивация была продемонстрирована в контролируемых условиях в лаборатории. Эффективность УФ-света на практике зависит от таких факторов, как время воздействия и способность УФ-света достигать вирусов в воде, воздухе, а также в складках и трещинах материалов и поверхностей.
  • Инфекции COVID-19 могут быть вызваны контактом с загрязненными поверхностями и последующим прикосновением к областям лица (реже, чем при личном контакте, но все же проблема) [vi] .Сведение к минимуму этого риска является ключевым моментом, поскольку вирус COVID-19 может жить на пластиковых и стальных поверхностях до 3 дней [vii] . Обычная очистка и дезинфекция могут оставить после себя некоторое остаточное загрязнение, которое УФС может обработать, что свидетельствует о целесообразности применения нескольких дезинфицирующих средств. Было показано, что УФ-излучение обеспечивает высокий уровень инактивации близкого родственника вируса COVID-19 (например, SARS-CoV-1, протестированного с адекватной дозой УФ-излучения 254 нм в суспензии в жидкости) [viii] .IUVA считает, что аналогичных результатов можно ожидать при лечении вируса COVID-19, SARS-CoV-2. Однако ключевым моментом является применение UVC таким образом, чтобы он мог эффективно воздействовать на любые оставшиеся вирусы на этих поверхностях.
  • IUVA также соглашается с рекомендациями CDC для больниц о том, что бактерицидная эффективность UVC зависит от поглощающих свойств UVC суспензии, поверхности или аэрозоля, в котором находится организм; по типу или спектру действия микроорганизма; а также множеством конструктивных и эксплуатационных факторов, которые влияют на дозу облучения микроорганизма УФ-излучением (https: // www.cdc.gov/infectioncontrol/guidelines/disinfection/).
  • IUVA признает, что в случаях, когда ультрафиолетовый свет не может достичь определенного патогена, этот патоген не будет дезинфицирован. Однако в целом уменьшение общего количества патогенов снижает риск передачи. Общая патогенная нагрузка может быть существенно снижена путем нанесения УФ-излучения на многие поверхности, которые легко подвергаются воздействию, в качестве вторичного барьера для очистки, особенно в спешных условиях.Это будет относительно простой вопрос освещения соответствующих поверхностей УФ-светом, например воздуха и поверхностей вокруг / внутри помещений и средств индивидуальной защиты.

Безопасны ли устройства УФ-дезинфекции?

Как и любая дезинфекционная система, устройства UVC должны использоваться надлежащим образом для обеспечения безопасности.) Все они производят различное количество света UVC с длинами волн от 200 до 280 нм. Этот ультрафиолетовый свет C намного «сильнее», чем обычный солнечный свет, и может вызвать серьезную реакцию кожи, подобную солнечному ожогу, а также может повредить сетчатку глаза, если подвергнуться воздействию.Некоторые устройства также производят озон как часть своего цикла, другие производят свет и тепло, как аппарат для дуговой сварки, третьи перемещаются во время своих циклов. Следовательно, при использовании всех дезинфицирующих устройств необходимо учитывать общую безопасность машины и человека, и эти соображения следует учитывать в руководстве по эксплуатации, при обучении пользователей и соответствующем соблюдении требований безопасности.

Существуют ли стандарты производительности и протоколы проверки UVC для устройств УФ-дезинфекции?

Учитывая широкий спектр устройств UVC, продаваемых для дезинфекции воздуха, воды и твердых поверхностей, отсутствие единых стандартов производительности и очень разную степень исследований, разработок и проверочных испытаний, которые проводятся на различных устройствах, IUVA призывает потребителей проявляйте осторожность при выборе оборудования и ищите свидетельства испытаний третьей стороной, а также сертификации материалов и электрических компонентов устройства известными организациями, такими как NSF, UL, CSA, DVGW-OVGW или другими международными требованиями, если это применимо.

Для устройств UVC, предназначенных для инактивации воздуха и твердых поверхностей в отрасли здравоохранения, члены IUVA усердно работают с другими национальными организациями по стандартизации в области освещения и здравоохранения для разработки стандартов тестирования дезинфекции [x] . Цель состоит в том, чтобы разработать руководство, которое поможет поставщикам медицинских услуг во всем мире выбрать наилучшие технологии для своих учреждений для использования в борьбе с множественными лекарственно-устойчивыми организмами и другими патогенами [xi] , такими как вирус COVID-19.

IUVA скоро разместит веб-сайт, посвященный УФ-излучению и COVID-19, напишите нам по адресу [email protected], если вы хотите, чтобы мы отправляли вам уведомления о публикациях на веб-сайтах и ​​других мероприятиях IUVA.

Загрузить информационный бюллетень со ссылками [открывает документ Word]

Контактное лицо:

Международная ассоциация ультрафиолетового излучения (IUVA)

Mickey Fortune

Электронная почта:

[email protected]

Веб-сайт:

http : // www.iuva.org

Гарантия качества морепродуктов

Гарантия качества морепродуктов


Этот раздел подготовлен доктором Сюзанной Кнохель

6.1.1. Определения качества питьевой воды

Вода, используемая в пищевой промышленности, является одной из важных критических контрольных точек. Это верно для воды, используемой в качестве ингредиента, для воды, используемой для окончательного ополаскивания при очистке оборудования или вода, которая может каким-либо образом вступить в контакт с продуктом.Чаще всего это только что заявил, что вода должна соответствовать стандартам питьевой воды, а также по водоснабжению и качеству. в основном воспринимаются как должное. Однако местные стандарты могут несколько отличаться или даже отсутствовать. Качество исходной воды сильно различается от места к месту, как и водоподготовка. Контроль со стороны местных регулирующих органов также может отличаться. сильно зависит от местной ситуации. Наконец, внутризаводские проблемы могут иногда приводить к питьевая вода непригодна в качестве питьевой воды в конечной точке использования.

Итак, как определить приемлемое качество питьевой воды? В чем причина эти рекомендации? А что умеют кухонные комбайны?

Общепринятый перечень стандартов биологических и физико-химических параметров для питьевой воды не существует.

ВОЗ выпустила отличную книгу под названием «Рекомендации по качеству питьевой воды», том 1, 2, и 3 (ВОЗ 1984b). Том 1 касается ориентировочных значений, Том 2 содержит монографии по каждому загрязнителю, а Том 3 дает информацию о том, как обращаться с водоснабжение в небольших сельских населенных пунктах.В этой книге ВОЗ признает, что очень строгие стандарты не могут использоваться повсеместно, так как это может серьезно ограничить доступность воды, и вместо этого был введен ряд нормативных значений для более чем 60 параметров. разработан. Общий обзор стандартов, применяемых ВОЗ, ЕЭС, Канадой и США. приводится Премацци и др. (1989). Признано, что, например, большинство сельских колодцев все во всем мире возникнут трудности с соблюдением всех предлагаемых ориентировочных значений.Идет не говоря уже о том, что все параметры не могут быть отслежены, поэтому выбор и приоритеты должны быть сделано на основе анализа опасностей и осуществимости. Большинство стран (а в некоторых случаях даже отдельные провинции) имеют свои собственные руководящие принципы или стандарты. Основные микробиологические ориентировочные значения, однако, не так сильно различаются от места к месту. Ниже приведены микробиологические параметры и рекомендуемые значения, предложенные ВОЗ (Таблица 6.1) и EEC (Таблица 6.2)

Таблица 6.1. Микробиологические критерии (руководящие принципы) качества питьевой воды (ВОЗ, 1984b).

Организм в 100 мл 1) Нормативное значение Примечания
Водопроводное водоснабжение
Очищенная вода, поступающая в систему распределения
фекальные колиформные бактерии колиформ 0 мутность <1 NTU; для дезинфекции хлором, Ph предпочтительно <8.0, остаточный свободный хлор 0,2–0,5 мг / л через 30 мин (минимум) контакта
организмы 0
Вода в системе распределения
фекальных колиформ 0
колиформ в 95% образцов, исследованных в течение года —
организмов 0 при наличии больших запасов исследуются образцы.
колиформ в единичном образце, но не в последовательном
микроорганизмах 3 образца
20 9046 1

В случае воды, используемой для производства пищевых продуктов, жизненно важно, чтобы эти микробиологические нормативные значения должны соблюдаться, поскольку потенциально патогенные бактерии способны быстро размножаться, если их вводить в продукты питания, даже на начальном этапе низкие и неинфекционные дозы бактериальных возбудителей, опасность.

По возможности следует контролировать остатки дезинфицирующего средства и проводить периодические проверки бактериологическое качество должно быть проведено. Мутность, цвет, вкус и запах также легко контролируемые параметры. Если есть локальные проблемы с химическими компонентами (например, фторид, железо) или загрязняющие вещества из промышленности или сельского хозяйства (например, нитраты, пестициды, отходы горнодобывающей промышленности), мы надеемся, что поставщики воды должны отслеживать и устранять их.

6.1.2. Влияние водоподготовки, включая дезинфекцию, на микробиологические агенты

Водные процедуры варьируются от региона к региону в зависимости от доступных источников воды. В то время как грунтовые воды из осадочных водоносных горизонтов подверглись интенсивной фильтрации, вода из водоносных горизонтов твердых пород или поверхностных источников воды следует фильтровать как часть воды обработка с целью уменьшения содержания твердых частиц, микроорганизмов, органических и неорганическое вещество.

Паразиты в значительной степени удаляются фильтрацией.Уровни бактерий и вирусов также значительно уменьшаются, а механизмы удаления — это как фильтрация, так и адсорбция. В концентрация катионов влияет на адсорбцию, т. е. увеличение концентрации приводит к повышенная адсорбция. Ca 2+ и Mg 2+ кажутся особенно эффективными. Эти маленькие катионы уменьшит силы отталкивания между частицами почвы и микроорганизмами. Утюг оксиды также имеют высокое сродство к вирусам, а также бактериям.Гидроксид железа пропитанный лигнит даже был предложен в качестве местной фильтрующей / адсорбционной среды (Prasad и Чаудхури 1989).

На эффективность дезинфекции в значительной степени влияет тип дезинфицирующего средства , тип и состояние микроорганизмы, параметры качества воды, такие как мутность (или взвешенные твердые частицы), органическое вещество, некоторые неорганические соединения, Ph и температура . «твердость» из вода может косвенно влиять на дезинфекцию, так как отложения могут содержать микроорганизмы и защитить их от моющих и дезинфицирующих средств.

Тип дезинфицирующего средства

Наиболее распространенным дезинфицирующим средством является хлор, но также хлорамины, диоксид хлора, в некоторых случаях используются озон и ультрафиолетовый свет. Хлор дешев и доступен в в большинстве мест и мониторинг свободных остаточных уровней прост. Желательно поддерживать свободный уровень остаточного хлора 0,2–0,5 мг / л в системе распределения (ВОЗ 1984b). Для санация чистого оборудования до 200 мг / л.Во избежание коррозии ниже часто используются концентрации 50–100 мг / л и более длительное время контакта (10–20 минут). Хлорамины более стабильны, но менее бактерицидны и гораздо менее эффективны в отношении паразиты и вирус, чем хлор. Диоксид хлора более микробицидный, чем хлора, особенно при высоком pH, но есть опасения в отношении побочных продуктов. В в случае озона и ультрафиолетового излучения нет остатков, которые нужно контролировать. Озон кажется очень эффективен по отношению к простейшим.Эффективность УФ-дезинфекции заметно снижается, если мутность или дисперсное органическое вещество, и часто возникают проблемы из-за отсутствие обслуживания лампы.

Вид и состояние микроорганизма

Для большинства дезинфицирующих средств порядок чувствительности:

вегетативные бактерии> вирусы> споры бактерий, кислотоустойчивые бактерии и цисты простейших

Чувствительность варьируется внутри группы и даже внутри вида.Наши индикаторные бактерии к сожалению, среди более чувствительных микроорганизмов присутствие, например, фекальный бактерии кишечной палочки в обработанной, дезинфицированной воде, поэтому очень ясно указывает на то, что вода содержит потенциально патогенные микроорганизмы при отсутствии такого индикатора бактерии не гарантируют, что вода свободна от патогенов.

Бактерии из бедных питательными веществами среды, а также бактерии, подвергшиеся стрессу, также могут проявлять значительно повышенное сопротивление.Некоторые из упомянутых эффектов на эффективность бесплатного хлора показаны в Таблице 6.3.

Факторы качества воды

Если микробы связаны с зернистым материалом или другими поверхностями , эффект количество дезинфицирующих средств, таких как хлор, резко снижается. Прикрепление Klebsiella pneumonia к стеклянные поверхности могут, например, повысить стойкость к свободному хлору в 150 раз (Sobsey 1989).

Органические вещества могут реагировать и «поглощать» дезинфицирующие средства, такие как хлор, озон и присутствие также будет мешать ультрафиолетовому излучению.Хлорамины менее восприимчивы к органическая материя.

Ph важен для дезинфекции хлором и диоксидом хлора с большей инактивацией. при низком pH в случае хлора и большей инактивации при высоком pH в случае хлора диоксид (Собси 1989).

В целом, более высокие температуры приводят к увеличению скорости инактивации.

Таблица 6.2. Микробиологические критерии (руководящие принципы) качества питьевой воды (EEC 1980).
Максимально допустимое концентрация (ПДК)
Параметры Результаты: объем образца (мл) Контрольный уровень (GL) Метод мембранного фильтра Метод нескольких трубок (MPN)
Всего колиформ 100 0 MPN <1
Фекальные колиформы 0 MPN <1
Фекальные стрептококки 100 0 MPN <1
Сульфитредуцирующие клостридии
Общее количество бактерий 1 1) 101)
для воды, поставляемой для потребления человеком 1 2) 1002)
904 E. coli Кислотостойкий 904 8 G. лямблии
Таблица 6.3. Инактивация микроорганизмов свободным хлором.
Организм Вода Cl 2 остатки, мг / л Температура, ° C Ph Время, мин. Сокращение% C * t1)
E. coli BDF 2) 0,2 25 7,0 15 99,997 99,997 CDF 4) 1,5 4 ? 60 99.9 2,5
E. coli + GAC 5) CDF 1,5 4 ? 60 << 10 >> 60
L. пневмофила водопроводная 0,25 20 7,7 58 99 15 )
L. пневмофила кран 0,25 20 7,7 4 99 1,1
(выращенные в среде) BDF 0,3 25 7,0 60 40 >> 60
Mycobacterium 9064 903 chelonei
Вирус 5 10,0 49,6 99,99 12,3
Гепатит А BDF 0,5 5 6,0,99 9064 6,5
G. lamblia BDF 0,2–0,3 5 6.0 99 54–87
G. lamblia BDF 0,2–0,3 5 7,0 99 83– BDF 0,2–0,3 5 8,0 99 119–192

6.1.3. Использование непитьевой воды на заводе

Использование непитьевой воды может быть необходимо для целей водосбережения или желательно из-за стоимости.Вода может, например, быть поверхностной водой, морской водой или хлорированной вода из баллончика остывает. Относительно чистая вода, например хлорированная вода после охлаждения банки. операции могут использоваться для мытья банок после закрытия перед термообработкой, для транспортировка сырья до обработки (после остывания воды), для начального мойка ящиков, для охлаждения компрессоров, для использования в линиях противопожарной защиты в непищевых продуктах площадей и для дымления отходов. Абсолютно необходимо, чтобы питьевой и непитьевой вода должна быть в отдельных системах распределения, которые должны быть четко опознаваемый.Если питьевая вода используется для пополнения непитьевой воды, источник питьевой воды должен быть защищен от протечек клапана, противодавления, например. адекватными воздушными зазорами (Кацуяма и Страчан, 1980). Обратный поток из-за внезапных перепадов давления или К сожалению, закупорка труб произошла во многих системах.

Запрещается использовать потенциально загрязненную воду, например прибрежную или поверхностную воду. в производственных помещениях, но может, если это приемлемо с эстетической точки зрения, использоваться для удаления отходы в местах, где невозможен контакт с продуктами питания.

6.1.4. Система мониторинга качества воды

Ответственное лицо должно постоянно обновлять справочные чертежи трубы. система и полномочия по устранению тупиков. Особенно в тех случаях, когда у растения претерпев множество изменений, пиперуны могут становиться все более сложными по сравнению с годы. Это лицо также должно быть в контакте с местными гидротехническими сооружениями и властями. чтобы быть в курсе особых событий (ремонтов, аварий с загрязнением или других изменений).

Схема контроля качества может состоять из схематизированного плана всей выборки. баллов и контрольный список для каждого пункта с описанием того, что проверять и почему, частота, кто берет образец, кто проводит анализ, каков предел (значение, допуск) и что делать в случае отклонения (Poretti 1990). Если вода явно загрязнена, есть Конечно, нет причин ждать аналитических результатов. Частота дискретизации и диапазон параметры будут меняться в зависимости от обстоятельств и потребностей и возможностей конкретного растение.Программа-минимум может, например, состоять из ежедневного контроля свободного хлора. и общий подсчет плюс колиформ на еженедельной основе и специальный, более интенсивный мониторинг программа для использования после ремонта, при использовании новой воды и т. д.

Технические процедуры, описывающие анализы общих индикаторных организмов: даны в стандартных учебниках. Руководство ВОЗ по качеству питьевой воды, т. 3 (ВОЗ 1984b) упоминает некоторые методы и оборудование, подходящие для небольших сельских запасов.Значения, используемые компанией, должны относиться к конкретному используемому методу и Рекомендации должны включать порядок отбора проб (расход, объем, емкость для отбора проб, маркировка и т. д.), а также как обращаться с образцом и исследовать его. Хотя обычно используемые методы для обнаружения, например фекальные колиформные бактерии — стандартные анализы. образцы часто встречаются. Образцы должны быть обработаны в течение 24 часов или меньше и сохранены. в прохладном, но не замороженном виде (желательно ниже 5 ° С) и в темноте.Воздействие солнечного света может быть очень драматичным, вызывая ложноотрицательные результаты (Knochel 1990).

Если для дезинфекции используется хлорирование, контроль уровня свободного хлора является самым простым. способ проверки водоподготовки и должен выполняться наиболее часто (например, ежедневно основе). Простые лабораторные методы описаны ВОЗ (1984b) и коммерческими измерительными полосками. теперь доступны для измерений на месте (например, Merckoquant Chlor 100 от Мерк).Параметры микробиологического индикатора можно проверять реже. Если не используются системы дезинфекции, не оставляющие следов, проверка оборудования должна делать регулярно. Работоспособность систем можно контролировать еженедельно. используя измерения индикаторных бактерий.

Этот раздел подготовлен профессором Могенсом Якобсеном

6.2.1. Введение

Очистка и дезинфекция относятся к наиболее важным операциям в современной пищевой промышленности.Многочисленные и дорогостоящие случаи порчи пищевых продуктов и недопустимого заражения патогенные бактерии были прослежены до неудач или недостаточности этих процедур.

Стандарты гигиены, необходимые для предотвращения таких проблем, различны. На заводе, упаковка продуктов, обработанных в целях безопасности (например, путем термообработки), будет очень строгой. строгий при обращении со свежей охлажденной рыбой с коротким сроком хранения и приготовленной перед потреблением будет менее требовательным.

Такие факторы, как ведение домашнего хозяйства, личная гигиена, обучение и образование, планировка завода, дизайн. оборудования и машин, характеристики выбранных материалов, техническое обслуживание и общие состояние растения может легко стать более важным, чем фактическая очистка и дезинфекция. Для оптимального использования ресурсов и обеспечения микробиологического качества продукты, важно, чтобы все эти факторы были учтены при принятии решения о чистке и процедуры дезинфекции.

В некоторых случаях может быть даже лучше избегать чистки и дезинфекции, потому что больше вреда чем можно сделать хорошее. Например, это относится к пыли, скопившейся на трубах и конструкции, если время не позволяет полностью удалить. Далее, в качестве другого примера, высушите области всегда должны быть сухими, и уборка будет ограничена пылесосом, если в наличии, или подметание, чистка щеткой и т. д.

Из вышеизложенного следует, что для каждого конкретного пищевого предприятия или операции реализация очистки и дезинфекции — это отдельный проект, в котором специалисты, внутренние или внешний, следует проконсультироваться.

Очистка и дезинфекция будут такими же процессами, как и любые другие операции на предприятии, и они должны должны быть в равной степени задокументированы, как и соответствующий контроль процесса, т.е. очистки и дезинфекции соответственно. Если применяется концепция HACCP, эти процедуры должны рассматриваться как критические контрольные точки (ККТ). Если такая система качества, как ISO 9000, в процессе эксплуатации они должны быть интегрированы в Систему, как показано в предыдущей главе. этой книги.Ответственное руководство осознает, что эти процедуры являются составными частями. производства и плохие гигиенические условия на предприятиях пищевой промышленности в первую очередь будут вызвано отсутствием у руководства знаний и приверженности.

Для всего процесса задействованы три отдельные операции, т. Е.

и) подготовительные работы; ii) очистка и iii) дезинфекция. Они четко различимы операции, но прочно связанные друг с другом таким образом, что конечный результат не будет приемлемым, если все три не выполнены правильно.В таблице 6.4 показаны различные шаги, которые быть включенным в полный цикл.

Таблица 6.4. Этапы входят в полный цикл подготовительных работ, чистки, дезинфекция и контроль.

  1. Убрать продукты, очистить место от мусорных ведер, контейнеров и т. Д.

  2. Демонтировать оборудование, чтобы обнажить поверхности, подлежащие очистке. Снимите мелкое оборудование, детали и приспособления, подлежащие очистке в указанных область.Накройте чувствительные объекты, чтобы защитить их от воды и т. Д.

  3. Очистите территорию, машины и оборудование от остатков пищевых продуктов, промыв их водой. водой (холодной или горячей) и с помощью щеток, веников и т. д.

  4. Нанесите чистящее средство и используйте механическую энергию (например, давление и кисти) по мере необходимости.

  5. Тщательно промойте водой, чтобы полностью удалить чистящее средство. подходящее время контакта (остатки могут полностью подавить действие дезинфекция).

  6. Контроль уборки.

  7. Стерилизация химическими дезинфицирующими средствами или нагреванием.

  8. Смойте стерилизующее средство водой по истечении соответствующего времени контакта. Этот заключительное ополаскивание не требуется для некоторых стерилизующих средств, например H 2 , O 2 , составы на основе которые быстро разлагаются.

  9. После последнего ополаскивания оборудование собирают и сушат.

  10. Контроль чистки и дезинфекции.

  11. В некоторых случаях рекомендуется провести повторную дезинфекцию (например, горячей водой). или низкий уровень хлора) непосредственно перед началом производства.

6.2.2. Подготовительные работы

На этом этапе производственная зона очищается от остатков продуктов, разливов, контейнеров и другие незакрепленные предметы. Машины, конвейеры и т. Д. Демонтируются так, чтобы все места, где могут накапливаться микроорганизмы, которые становятся доступными для очистки и дезинфекции.Способствовать электрические установки и другие чувствительные системы должны быть защищены от воды и используемые химикаты.

Перед использованием чистящего средства необходимо провести грубую процедуру удаления остатков пищи. очистить щеткой, соскабливанием или подобным образом. Все поверхности должны быть дополнительно подготовлены к использованию. моющих средств путем предварительного ополаскивания, предпочтительно холодной водой, которая не будет коагулируют белки. Горячая вода может использоваться для удаления жира или сахара в тех случаях, когда белок не присутствует в значительных количествах.

Завершение подготовительных работ должно быть проверено и зарегистрировано, как и любой другой процесс, для обеспечения качества полного цикла очистки и дезинфекции.

6.2.3. Уборка

Очистка проводится для удаления всех нежелательных материалов (остатков пищи, микроорганизмов, накипь, жир и т. д.) с поверхностей установки и технологического оборудования, оставляя поверхности чистые, что определяется на вид и на ощупь, без остатков от очистки агенты.

Присутствующие микроорганизмы будут либо включаться в различные материалы, либо прикрепляться к поверхностям как биопленки. Последние не удаляются полностью при очистке, но опыт показал, что большинство микроорганизмов удаляется. Тем не мение, некоторые еще будут дезактивированы во время дезинфекции.

Эффективность процедуры очистки в целом зависит от:

  • Тип и количество удаляемого материала.

  • Химические и физико-химические свойства чистящего средства (например, кислоты или прочность щелочи, поверхностная активность и т. д.) при концентрации, температуре и воздействии время использовано.

  • Приложенная механическая энергия, например турбулентность чистящих растворов в трубах, перемешивание эффект, удар водяной струи, «локоть-смазка» и др.

  • Состояние очищаемой поверхности.

Некоторые поверхности e.грамм. ржавые стальные и алюминиевые поверхности просто невозможно очистить, означает, что дезинфекция также становится очень неэффективной. То же самое и с другими поверхностями. например дерево, резина и т. д. Предпочтительным материалом, очевидно, будет высококачественная нержавеющая сталь. стали.

Типы остатков, подлежащих удалению на пищевых предприятиях, в основном будут следующими:

  • Органические вещества, такие как белки, жиры и углеводы. Это наиболее эффективно удаляется сильнощелочными моющими средствами (особенно каустической содой, NaOH).Кроме того, обнаружено, что комбинации кислотных моющих средств (особенно фосфорной кислоты) и неионные поверхностно-активные вещества эффективны против органических веществ.

  • Неорганические вещества, например соли кальция и других металлов. В пивном камне, молоке камень и др., соли инкрустированы остатками протеина. Наиболее эффективно они удаляются кислотными чистящими средствами.

  • Биопленки, образованные бактериями, плесенью, дрожжами и водорослями, можно удалить путем очистки. агенты, которые эффективны против органических веществ.

Большинство чистящих средств работают быстрее и эффективнее при более высоких температурах, поэтому они могут будет выгодно чистить при высокой температуре. Очистку часто проводят при 60–80 ° C в районы, где использование таких высоких температур выгодно.

Вода

Вода используется как растворитель для всех чистящих и стерилизующих средств, а также для промежуточных ополаскивания и заключительное ополаскивание оборудования.

Поэтому решающее значение имеет химическое и микробиологическое качество воды. для эффективности процедур очистки, как уже было описано в предыдущем разделе эта глава.В принципе, вода, используемая для очистки, должна быть питьевой.

Жесткая вода содержит большое количество ионов кальция и магния. Когда вода нагретые, соли кальция и магния, соответствующие временной жесткости, будут выпадают в осадок в виде нерастворимых солей. Также некоторые чистящие средства, особенно щелочи, могут выпадать в осадок. соли кальция и магния.

Помимо снижения эффективности моющих средств жесткая вода приводит к образованию отложения или чешуйки.Чешуйки, которые можно сформировать несколькими другими способами, — это не только неприглядный, но нежелательный по нескольким причинам:

  • Они служат убежищем для микроорганизмов и защищают их.

  • Они снижают скорость теплообмена на поверхностях теплообменника. Это может привести к неполной обработке, непастеризации или недостаточной стерилизации.

  • Наличие окалины увеличивает коррозию.

Образование накипи можно уменьшить путем добавления хелатирующих и секвестрирующих агентов, которые связывают кальций и магний в нерастворимые комплексы.Однако желательно предотвратите выпадение осадков, смягчив воду перед ее использованием для очистки. Смягчение может эффективно достигается за счет ионного обмена, в котором ионы кальция и магния заменены ионами натрия, соли которого растворимы. Современный и более дорогой, Способ умягчения воды — обратный осмос.

Вода, используемая для окончательного ополаскивания, должна быть безупречной по микробиологической чистоте. Если не, в некоторых случаях будет допустимо включение низких уровней хлора i.е. несколько промилле.

Чистящие средства

Идеальное моющее средство должно характеризоваться следующими свойствами:

  • Обладает достаточной химической способностью растворять удаляемый материал.

  • Имеет достаточно низкое поверхностное натяжение, чтобы проникать в трещины и щели; должно уметь рассеивать разрыхленный мусор и удерживать его во взвешенном состоянии.

  • При использовании с жесткой водой он должен смягчать воду и растворять соли кальция. свойства для предотвращения выпадения осадков и образования накипи на поверхностях.

  • Он свободно смывается с растений, оставляя его чистым и свободным от остатков, которые могут повредить изделия и отрицательно повлиять на стерилизацию.

  • Не вызывает коррозии или другого повреждения оборудования. Рекомендуется всегда проверять, проконсультировавшись с поставщиком машин и т. д.

  • Не опасно для оператора.

  • Он совместим с используемой процедурой очистки, как ручной, так и механической.

  • Если твердое вещество, оно должно легко растворяться в воде, а его концентрация легко проверяется.

  • Он соответствует требованиям законодательства, касающимся безопасности и здоровья, а также биоразлагаемости.

  • Достаточно экономично в использовании.

Моющего средства со всеми этими характеристиками не существует. Поэтому нужно для каждого человека операции очистки, выберите компромисс, выбрав подходящее чистящее средство и воду. добавки для обработки, чтобы комбинированное моющее средство имело наиболее важно для данной процедуры.

При выборе чистящего средства можно выбрать либо готовый заводской продукт, имеет желаемые свойства, либо его можно приготовить в домашних условиях, следуя указаниям, приведенным в таблице. 6.5. В этом случае необходимо убедиться, что компоненты взаимно совместимы.

Таблица 6.5 (из Lewis 1980) показывает важные характеристики наиболее чистящих средств. обычно используется в пищевой промышленности.

Таблица 6.5. Типы, функции и ограничения чистящих средств, используемых в пищевой промышленности (из Lewis 1980).
Категории водных очистителей Приблизительные концентрации для использования (%, мас. / Об.) 1) Примеры используемых химических веществ2) Функции Ограничения
Чистая вода 100 Обычно содержит растворенную воздух и растворимые минералы в небольших количествах Растворитель и носитель для почв, а также химические очистители Жесткая вода оставляет отложения на поверхностях. Остаточная влага может способствовать росту микробов на вымытых поверхностях.
Сильная щелочь 1–5 Гидроксид натрия Ортосиликат натрия Сесквисиликат натрия Моющие средства для жиров и белков. Осадок жесткость воды Сильно агрессивен. Трудно удалить смыванием. Раздражает кожу и слизистые оболочки.
Слабая щелочь 1–10 Карбонат натрия Сесквисиликат натрия Тринатрийфосфат Тетраборат натрия Моющие средства. Буферы с pH 8,4 или выше. Умягчители воды Умеренно коррозионный.Высокие концентрации вызывают раздражение кожи
Неорганическая кислота 0,5 Сероводородная азотно-фосфорная сульфаминовая Производит Ph 2,5 или ниже Удаляет неорганические осадки с поверхностей Очень вызывает коррозию металлов, но может частично подавляться антикоррозийным действием агенты. Раздражает кожу и слизистые оболочки
Оранжевая кислота 0,1–2 Уксус
Гидроксиуксусная
Молочный
Глюконовый
Лимонный
Татарский
Левулиновая
Saccharic
Умеренно коррозионный, но может подавляться различными антикоррозийными составами
Анионные смачивающие вещества 0.15 или менее Мыло Сульфатные спирты Сульфатные углеводороды Арилалкилполиэфирсульфаты Сульфированные амиды Алкиларилсульфированные Влажные поверхности проникают в щели и тканые ткани Эффективные моющие средства Эмульгаторы для масел, жиров, восков и пигментов Совместимы с чистящими средствами синергетический Некоторое количество пены чрезмерно Несовместимо с катионными смачивающими веществами
Неионогенные смачиватели 0,15 или меньше Конденсаты полиэфиров полиэфиров Конденсат аминов и жирных кислот Превосходные моющие средства для масел.Этиленоксид-жирные кислоты для контроля пенообразования Может быть чувствительным к кислотам Используется в смесях смачивателей
Катионные смачивающие вещества 0,15 или менее Четвертичный аммоний Некоторый смачивающий эффект Антибактериальное действие Не совместим с анионными смачивающие агенты
Секвестрирующие агенты Варьируемые (в зависимости от жесткости воды) Тетранатрийпирофосфат Триполифосфат натрия Гексаметафосфат натрия Тетраполифосфат натрия Пирофосфат натрия Кислота натрия без 3-хлорной кислоты (натрия глютеновая кислота 17) 90% натрия ацетатная соль 4 (натрия гл. Образует растворимые комплексы с ионами металлов, таких как кальций, магний и железо, для предотвращения образования пленки на оборудовании и посуде. См. Также сильные и слабые щелочи выше Фосфаты инактивируются длительным воздействием тепла Фосфаты нестабильны в кислоте Раствор
Ab взрывчатые вещества Переменная Вулканический пепел Сейсмотит Пемза Полевой шпат Кремнеземная мука Стальная вата 3) Металл из пластмассы, шарики из хлора 3) Щетки для чистки Удаление грязи с поверхностей с помощью чистки Может использоваться с моющими средствами для сложных работ по уборке Царапины на поверхности Частицы могут попасть в оборудование и позже появиться в продуктах питания Повредить кожу рабочих
Хлорированные соединения 1 Дихлорциануровая кислота Трихлорциануровая кислота Дихлоргидантоин Используется с подщелачивающими белками 904 для минимизации отложений молока Не обладает бактерицидным действием из-за высокого pH. Концентрации варьируются в зависимости от щелочного очистителя и условий использования
Амфотерики 1.2 Смеси катионной соли амина или четвертичного аммониевого соединения с анионным карбоксисоединением, сложным сульфатным эфиром или сульфоновой кислотой Разрыхлить и размягчить обугленные остатки пищи на духовках или других металлических и керамических поверхностях Не подходит для использования на поверхностях, контактирующих с пищевыми продуктами4)
Ферменты 0,3 -1 Протеолитические ферменты Расщепляющие белки и другие сложные органические почвы Инактивируются под действием тепла Некоторые люди становятся сверхчувствительными к коммерческим препаратам.
Системы очистки

Различные этапы, показанные в Таблице 6.4, включая стерилизацию, представляют собой наиболее комплексная процедура ручной очистки и дезинфекции или Clean Out of Place (КС). Подходит для современных растений. Для очистки заводов по переработке жидкостей, например пивоварен и молочных заводов будут использоваться системы очистки на месте (CIP), основанные на циркуляции путем перекачивания воды, чистящих и дезинфицирующих средств. В принципе две системы будут похожи.

На большинстве заводов будет использоваться комбинация COP и CIP. Использование CIP может быть ограничено к части растений или даже к конкретной машине. Однако независимо от типа и размер производства продуктов питания общие принципы, лежащие в основе сложного цикла, показаны в таблице 6.4 следует помнить и применять для обеспечения эффективной очистки и дезинфекции.

Частота очистки и дезинфекции будет варьироваться от нескольких раз в течение рабочий день i.е. при каждом крупном перерыве до одного раза в день, в конце производства или даже реже. Иногда дезинфекция не включается, например, в местах, которые должны быть сухими и для сред с материалами, которые нельзя дезинфицировать, или помещений, непригодных для дезинфекция. В таких случаях чистка по-прежнему очень важна для общего внешнего вида и гигиеническое состояние завода или помещения и общее отношение к гигиене сотрудники.

Управление уборкой

Как упоминалось ранее, эффективная очистка является предпосылкой эффективной дезинфекции.Этот указывает на важность контроля очистки. Как описано в Таблице 5.18 в предыдущая глава наиболее важным контролем является визуальный осмотр и другие экспресс-тесты для демонстрируют следующие важные результаты очистки:

  • Все очищенные поверхности должны быть чистыми.

  • Чтобы все поверхности на ощупь были свободны от остатков пищи, окалины и других материалов и запах без нежелательных запахов.

Кроме того, концентрации и pH чистящих средств, температуры при горячей чистке используется, и время контакта должно контролироваться и регистрироваться. Измерения pH или аналогичное испытание промывочной воды может использоваться, чтобы убедиться, что чистящее средство удалено. чтобы он не мешал дезинфицирующему средству.

Все эти меры контроля являются быстрыми и позволяют немедленно принять решение о том, следует ли очистку следует повторить, частично или полностью, либо перейти к процессу дезинфекции.Все средства контроля и т. Д. Должны быть зарегистрированы как часть Системы качества.

На данном этапе микробиологический контроль не имеет реальной цели. Во-первых, биопленки и возможно присутствие выживших микроорганизмов и, во-вторых, надежные быстрые методы недоступен.

6.2.4. Дезинфекция

Традиционно для описания процедур используются термины «дезинфекция» и «дезинфицирующие средства». и агенты, используемые в пищевой промышленности для обеспечения микробиологически приемлемого стандарта гигиена.Эта практика будет соблюдаться, хотя понятно, что процедуры и Описанные агенты редко вызывают «стерильность», т.е. полное отсутствие жизнеспособных микроорганизмов.

Дезинфекцию можно производить с помощью физических процедур, таких как тепло, УФ. облучением, или средства химических соединений. Среди физических процедур следует описать только тепло.

Использование тепла в виде пара или горячей воды является очень безопасным и широко используемым методом. метод дезинфекции.Наиболее часто используемые химические вещества для дезинфекции:

  • Хлор и соединения хлора.

  • Йодофоры.

  • Перуксусная кислота и перекись водорода.

  • Соединения четвертичного аммония.

  • Амфолитические соединения.

В таблице 6.6 приведены характеристики некоторых из этих дезинфицирующих средств и их применения. пара.

Дезинфекция с использованием тепла

Нагревание при достаточно высоких температурах в течение достаточно длительного времени является самым безопасным методом убивающие микроорганизмы. Скорость, с которой происходит тепловое уничтожение, зависит от температуры, влажность, тип микроорганизма и среда, в которой микроорганизмы возникают при термической обработке. Если микроорганизмы попали в чешуйки или других веществ, они защищены, и даже нагревание не может быть эффективным.это Важно вспомнить кинетику тепловой инактивации микроорганизмов:

logC t = logC o — K x t,

, где C o = исходная популяция живых микроорганизмов (начальное количество жизнеспособных микроорганизмов) и C t = общая выживаемость по истечении времени t. K — постоянная величина (= наклон прямой) и зависит от соответствующий микроорганизм и условия эксперимента. K описывается как смерть показатель.Видно, что количество выживших микроорганизмов в момент «t» определяется исходный уровень заражения, а также константа смертности и время нагрева.

Циркуляция горячей воды (около 90 ° C) очень эффективна. Вода должна циркулировать не менее 20 минут после того, как температура возвратной воды поднимется до 85 ° C или более. Очевидно, что обработка паром также эффективна, когда это применимо.

  • 0 Хорошее
  • 0 Хорошее
  • 0 Удовлетворительное Хорошее
  • Нет 904 Отчасти
  • 0
  • 0 Сильно 9
  • химический
    Таблица 6.6. Сравнение наиболее часто используемых дезинфицирующих средств (ICMSF 1988).
    Пар Хлор Йодофоры QAC / QUATS поверхностно-активные вещества Кислота анионная
    Эффективна против грамположительных бактерий (молочнокислые, клостридии, Bacillus, Staphylococcus) Best Good Good Good Good
    Грамотрицательные бактерии ( E. coli , Salmonella, психротрофов) Лучшее Хорошее Хорошее Плохое Хорошее
    Споры Хорошее Хорошее Плохое Плохое
    Свойства Коррозионное Нет Да Незначительно Нет Незначительно
    904 Слабая жесткая вода Некоторые Незначительно
    Раздражает кожу Да Да Да Нет Да
    Под влиянием органических веществ
    Несовместимо с: Материалы, чувствительные к высоким температура Фенолы, амины, мягкие металлы Крахмал, серебро Анионное смачивание средства, мыла. Катионные поверхностно-активные вещества и щелочные детергенты
    Стабильность использования раствора Быстро растворяется Рассеивается медленно Стабильно Стабильно
    Стабильность в горячем растворе (выше 66 ° C) Нестабильно, немного составы стабильны легко использовать (лучше всего использовать при температуре ниже 45 ° C) стабильные стабильные
    оставляет активный остаток нет нет да да да 45 Ненужный Простой Простой Простой Сложный
    Максимальный уровень, разрешенный USDA и FDA без промывки Без ограничений 200 ppm 4 2590 ppm 4 2590 ppm
    Эффективен при нейтральном Ph Да Да Нет Нет Нет
    Дезинфекция с использованием химических средств

    При использовании химических дезинфицирующих средств смертность от микроорганизмов зависит, среди прочего, от прочее, от микробицидных свойств агента, его концентрации, температуры и pH. а также степень контакта дезинфицирующего средства с микроорганизмами.Хороший контакт получается, например за счет перемешивания, турбулентности, гладкости поверхностей и низкого поверхностного натяжения. Как и в случае с тепловая дезинфекция, разные микроорганизмы проявляют разную устойчивость к химическим стерилизаторам. Кроме того, загрязнение неорганическими или органическими веществами может снизить уровень смертности. значительно. Как упоминалось ранее, эффективная дезинфекция может быть достигнута только после эффективная уборка. Желаемое дезинфицирующее средство для растений будет характеризоваться следующим: недвижимость:

    • Обладает достаточным антимикробным действием, чтобы убить микроорганизмы, присутствующие в доступное время и должно иметь достаточно низкое поверхностное натяжение, чтобы обеспечить хорошее проникновение в поры и трещины.

    • Он свободно смывается с растений, оставляя его чистым и свободным от остатков, которые могут навредить продуктам.

    • Не должно приводить к развитию устойчивых штаммов или каких-либо выживших микроорганизмов.

    • Не вызывает коррозии или другого повреждения оборудования. Рекомендуется спросить поставщиков оборудования и т. д. перед хлором или другими агрессивными веществами. используются дезинфицирующие средства.

    • Не представляет опасности для оператора.

    • Он совместим с используемой процедурой дезинфекции, будь то ручная или механический.

    • Если твердый, он должен легко растворяться в воде.

    • Его концентрацию легко проверить.

    • Устойчив при длительном хранении.

    • Соответствует требованиям законодательства, касающимся безопасности и здоровья, а также биоразлагаемость.

    • Достаточно экономичен в использовании.

    Часто бывает необходимо комбинировать стерилизующие средства с добавками, чтобы получить требуемые свойства.

    Для предотвращения развития устойчивых штаммов микроорганизмов может быть полезно: время от времени переходите с одного типа стерилизатора на другой.

    Это особенно рекомендуется при использовании соединений четвертичного аммония.

    Среди наиболее часто используемых стерилизующих средств следует кратко описать следующие.

    Хлор — одно из самых эффективных и широко используемых дезинфицирующих средств. Он доступен в несколько форм, таких как растворы гипохлорита натрия, хлорамины и другой хлор содержащие органические соединения. Также используются газообразный хлор и диоксид хлора.

    Хлорированные стерилизаторы с концентрацией свободного хлора 200 ppm очень активны, а также с некоторым очищающим эффектом.Дезинфицирующий эффект значительно снижается при использовании органических остатки присутствуют.

    Соединения, растворенные в воде, образуют хлорноватистую кислоту HOCI, которая является активный стерилизующий агент, действующий путем окисления. В растворе он очень нестабилен, особенно в кислотный раствор, в котором будет выделяться кислородный газ. Кроме того, решения более вызывает коррозию при низком Ph.

    К сожалению, бактерицидная активность в растворе кислоты значительно лучше, чем в растворе. щелочной, поэтому рабочий Ph должен быть выбран как компромисс между эффективностью и стабильность.Органические хлорированные стерилизаторы обычно более стабильны, но требуют более длительного контакта раз.

    При использовании в соответствующем диапазоне значений (200 ppm свободного хлора) хлорированные стерилизующие средства в растворах при температуре окружающей среды не вызывают коррозию высококачественной нержавеющей стали, но они вызывают коррозию других менее стойких материалов.

    Йодофоры содержат йод, связанный с носителем, обычно неионогенным соединением, из которого йод отпускается на стерилизацию.Обычно Ph снижается до 2–4 с помощью фосфорной кислоты. Йод оказывает максимальное действие в этом диапазоне pH.

    Йодофоры являются активными дезинфицирующими средствами с широким антимикробным спектром, как и хлор. Они инактивированы органическими веществами. Концентрации, соответствующие прибл. 25 частей на миллион свободный йод будет эффективным.

    Коммерческие составы часто бывают кислыми, что делает их способными растворять накипь. Они могут быть коррозионными в зависимости от состава, и они не должны использоваться при температуре выше 45 ° C как свободные йод может высвобождаться.Если остатки продукта и едких чистящих средств остались в мертвом состоянии ноги и подобные места, это может в сочетании с йодофорами вызвать очень неприятные «Фенольные» привкусы.

    Пероксид водорода и перуксусная кислота являются эффективными стерилизующими средствами, действующими путем окисления и с широкий антимикробный спектр. Разбавленные растворы можно использовать отдельно или в комбинации для дезинфекция чистых поверхностей. Они теряют активность быстрее, чем другие стерилизующие средства. в присутствии органических веществ и со временем они быстро теряют свою активность.

    Соединения четвертичного аммиака являются катионными поверхностно-активными веществами. Они эффективные фунгициды и бактерициды, но часто менее эффективны против грамотрицательных бактерий. Избежать развитие устойчивых штаммов микроорганизмов, эти соединения следует использовать только чередование с использованием других видов дезинфицирующих средств.

    Благодаря низкому поверхностному натяжению они обладают хорошими проникающими свойствами и такими же причина, их может быть трудно смыть.

    Если четвертичные соединения вступают в контакт с анионактивными моющими средствами, они выпадают в осадок и становятся инактивирован. Следовательно, смешивание или последовательное использование этих двух типов химикатов должно быть избегали.

    Амфолитические стерилизаторы обладают свойствами, аналогичными четвертичным аммиачным соединениям.

    Контроль дезинфекции

    Контроль дезинфекции будет заключительным контролем полного цикла очистки и дезинфекция.При условии, что очистка контролируется эффективно, как описано выше. дезинфекции будет эффективным при соблюдении следующих условий:

    • Контроль временного и температурного режима обеззараживания теплом.

    • Контроль активных концентраций химических дезинфицирующих средств.

    • Убедитесь, что все дезинфицируемые поверхности покрыты дезинфицирующим средством.

    • Контроль времени контакта.

    Вышеупомянутые меры контроля должны быть задокументированы, а наблюдения доложены и зарегистрированы как требуется в стандартных системах качества.

    Микробиологические испытания и контроль служат для проверки. Различные техники доступны, но ни один из них не является идеальным, и это не методы «в реальном времени», желательно для контроля очистки и дезинфекции. Ночная инкубация слишком поздно, чтобы исправить критические ситуации.

    Однако, если проводится через регулярные промежутки времени и планируется охватить все критические точки, полезно информация от микробиологического контроля может накапливаться со временем.Различные методы используются и должны быть упомянуты кратко.

    • мазок. Это самая обычная техника и одна из лучших. Используя стерильным тампоном из ваты, протирают часть продезинфицированной поверхности и бактерии, перенесенные в тампон, переносятся в разбавитель для определения колониеобразующие единицы в стандартных агаровых субстратах. Тампоны особенно полезны при места, где другие методы контроля могут быть использованы с трудом i.е. карманы клапаны и др.

    • Вода для окончательного ополаскивания. Мембранная фильтрация промывной воды и инкубация на агаре субстрат — очень чувствительный метод управления системами CIP, а также другими системы очистки и дезинфекции, в которых можно применять полоскание.

    • Пластины с прямой поверхностью. В этих методах чашки Петри или контактные стекла с селективным или агаровую среду общего назначения наносят на исследуемую поверхность с последующим нанесением путем инкубации и подсчета колониеобразующих единиц.Эти техники могут быть только наносится на плоские поверхности, что является ограничивающим фактором.

    • Биолюминометрический анализ АТФ. Это почти метод «в реальном времени», дающий ответ в течение нескольких минут. Он очень чувствителен и может использоваться вместе с тампоном для сбор микроорганизмов с поверхностей. Метод довольно неспецифический, и он может не отличить микроорганизмы от остатков пищи. Тем не мение, если применяется в определенных условиях, он может оказаться полезным и превосходит обычные методы, потому что он дает ответ в считанные минуты.

    Независимо от используемого метода, из проверочного анализа важно знать, что система работала, когда была установлена. Также важно знать тенденции как выражено в записанных результатах проверки. Цель изучения тенденций и проведение микробиологического контроля очистки и дезинфекции, очевидно, будет, чтобы предпринять корректирующие действия до того, как произойдет потеря контроля над продуктами или процессами.


    Политика Hilton в отношении COVID-19

    Наши инициативы

    Travel сейчас выглядит немного иначе, но наши приоритеты остаются прежними.Мы по-прежнему стремимся обеспечить вам безопасное и расслабляющее пребывание во всех наших отелях по всему миру. Это обязательство начинается с рассмотрения наших услуг и процессов, чтобы предпринять шаги для обеспечения максимально безопасного и приятного опыта.

    Hilton CleanStay

    Мы являемся первопроходцами нового стандарта чистоты в отелях. Мы сотрудничаем с RB, производителем Lysol & Dettol, для разработки новой программы Hilton CleanStay в рамках нашего обязательства обеспечить нашим гостям полное спокойствие во время их пребывания в любом из 18 брендов Hilton.

    Поддержка всех наших гостей

    Поскольку многие направления снова открываются, мы поддерживаем ваши нынешние и будущие поездки с помощью обновленных политик, новых процедур и многих из тех же замечательных преимуществ, которыми вы приехали.

    2021 Продление льгот Hilton Honors

    Чтобы помочь вам вернуться к новым воспоминаниям — когда вы снова будете готовы к поездке, — мы добавили еще больше гибкости для участников Hilton Honors, чтобы они могли дольше пользоваться своими баллами и статусом, а также быстрее зарабатывать элитный статус и бонусы вех. .

    Хилтон CleanStay

    Мы понимаем, что ожидания наших гостей в отношении уборки и дезинфекции отеля изменились. Вот почему мы приняли дополнительные меры, выходящие за рамки наших ведущих в отрасли стандартов очистки, заключив партнерские отношения с RB, производителем Lysol & Dettol, для разработки нашей программы Hilton CleanStay.Эта инновационная программа основывается на наших и без того строгих стандартах уборки, обеспечивая расширенное обучение членов команды, усиленную уборку общественных мест и скорректированное обслуживание еды и напитков, чтобы обеспечить нашим гостям беззаботное пребывание.

    Поддержка всех наших гостей

    Гибкость плана путешествия

    Все наши отели предлагают полностью гибкие варианты бронирования с бесплатными изменениями и отменами.Большинство отелей даже предоставляют возможность изменить или отменить бронирование не позднее, чем за 24 часа до дня прибытия *. За помощью обращайтесь в службу поддержки гостей Hilton.

    * Могут применяться некоторые исключения из 24-часового окна. Пожалуйста, ознакомьтесь с информацией о тарифах отеля, чтобы узнать о применимых условиях или исключениях, если таковые имеются, при бронировании или изменении бронирования.

    Гарантия соответствия цены

    Теперь мы знаем, как никогда раньше, вы хотите знать, что кто-то вас поддерживает.Вот почему мы продолжаем предлагать гарантию соответствия цены. Если вы найдете более низкую подходящую цену * на другом сайте, мы с радостью подберем ее и предоставим вам скидку 25%.

    Текущие услуги и удобства

    Социальное дистанцирование по-прежнему является рекомендуемой или обязательной практикой в ​​общественных местах.В целях вашей безопасности некоторые услуги или удобства могут быть изменены во время вашего пребывания, в том числе временно упрощенные услуги завтрака в некоторых брендах. Пожалуйста, свяжитесь с вашим отелем, чтобы узнать о последних требованиях и предложениях услуг.

    Теперь требуются маски для лица

    В соответствии с руководящими принципами CDC и ВОЗ, мы требуем, чтобы лица закрывались во всех общественных помещениях всех наших отелей по всей территории США.S., Карибский бассейн и Латинская Америка, для гостей и членов команды. Кроме того, мы продолжаем поощрять использование маскировочных покрытий в наших отелях по всему миру. Перед поездкой обязательно ознакомьтесь с местными правилами и инструкциями, чтобы узнать о другой информации, которая может повлиять на ваше пребывание. Мы ценим ваше понимание и с нетерпением ждем возможности служить вам.

    Готовы к путешествию? Спланируйте свой следующий отпуск.

    Мы вас прикрыли

    Чтобы предоставить участникам Hilton Honors максимальную гибкость, мы снова расширяем ваши льготы, внося новые изменения в нашу политику в отношении баллов и статусов.

    Ваши очки никуда не денутся

    Мы продлеваем срок действия баллов до 31 декабря 2021 года, чтобы вы могли более гибко использовать баллы, когда снова будете готовы к путешествию.

    Достичь элитного статуса раньше

    Начиная с 1 января, зарабатывайте Статус за ПОЛОВИНУ ночей, пребываний или базовых баллов, необходимых в 2021 году. Напоминаем, что ВСЕ ваши ночи 2020 года будут перенесены на следующий год, что даст вам возможность быстрее повысить свой статус в 2021 году.

    Получайте бонусы за вехи быстрее

    Зарабатывайте вехи за половину ночей. Накапливайте 10000 баллов за каждые 10 ночей проживания, начиная с 20 ночей (вместо 40) в 2021 году.Это означает, что вы получите больше очков к путешествию вашей мечты

    Сохраните свой статус и льготы до 31 марта 2022 г.

    Все участники с элитным статусом теперь сохранят свой текущий статус до 31 марта 2022 года, даже те, чей статус должен был понижаться в 2021 году.Это означает, что у вас будет больше времени, чтобы продолжать пользоваться любимыми преимуществами.

    Подарите элитный статус раньше

    Участники

    Diamond, которые останутся на 30 ночей (ранее 60 ночей) в 2021 году, смогут подарить статус Gold члену семьи или другу.Остановитесь на 60 ночей, и ваш подарок Gold будет повышен до Diamond (ранее 100 ночей). Какой лучший способ поделиться любимыми льготами в путешествии со своими близкими!

    Наслаждайтесь большей гибкостью и выгодой с картами Hilton Honors American Express

    У владельцев карт

    теперь есть больше времени, чтобы быстрее превратить повседневные траты в элитный статус и использовать бесплатные ночные вознаграждения в выходные дни в любой вечер недели.Условия применяются.

    Приложение Hilton Honors

    Участники

    Hilton Honors по-прежнему получают более удобный и бесконтактный доступ с помощью приложения Hilton Honors.Цифровая регистрация на рейс и Цифровой ключ позволяют пройти бесконтактную регистрацию, что позволит вам попасть прямо в выбранный номер. Обмен сообщениями с членами команды отеля, бесконтактная регистрация отъезда и просмотр квитанции также доступны в некоторых отелях. Присоединяйтесь к Hilton Honors и загрузите приложение бесплатно.

    1 миллион Спасибо, Yous

    !

    В партнерстве с American Express мы пожертвовали сотни тысяч ночлегов медицинским работникам, работающим на передовой, чтобы у них было место для отдыха, а их близкие были в безопасности.Программа со скидкой по-прежнему доступна через участвующие медицинские ассоциации.

    World Central Kitchen

    Расширяя наше партнерство с American Express и пожертвовав от них 1 миллион долларов на Всемирную центральную кухню Хосе Андреса (WCK), мы смогли обеспечить свежей едой медицинских работников, проживающих в отелях Hilton во время пандемии коронавируса.

    Поддержка наших сообществ

    На протяжении своей 101-летней истории Hilton оказывал гостеприимство и поддержку нуждающимся общинам.Вспышка COVID-19 не стала исключением. Наши отели по всему миру и в настоящее время продолжают удивлять нас своими историями о свете и тепле.

    Подробная информация о нашей политике

    Мы делаем все возможное, чтобы обеспечить безопасность вашего путешествия и максимальную гибкость, поскольку ситуация с новым коронавирусом (COVID-19) продолжает развиваться.Мы продолжим обновлять эту страницу, добавляя самую свежую информацию о гибкости бронирования, членских баллах Hilton Honors и статусе, а также многом другом.

    .

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *